摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
缩写词 | 第13-15页 |
第1章 绪论 | 第15-34页 |
1.1 BAP31的研究进展 | 第15-22页 |
1.1.1 BAP31的结构 | 第15-16页 |
1.1.2 BAP31的组织分布 | 第16-17页 |
1.1.3 BAP31的功能 | 第17-22页 |
1.2 T淋巴细胞 | 第22-32页 |
1.2.1 T细胞的分化成熟和胸腺选择 | 第22-24页 |
1.2.2 T细胞的记忆能力 | 第24-26页 |
1.2.3 T淋巴细胞的表面分子 | 第26-28页 |
1.2.4 T细胞亚群及功能 | 第28-32页 |
1.3 BAP31与T细胞 | 第32-33页 |
1.4 BAP31与T细胞的研究内容及意义 | 第33-34页 |
第2章 材料和方法 | 第34-59页 |
2.1 实验动物 | 第34-36页 |
2.1.1 携带Neu-mBAP31转基因杂合子小鼠 | 第34-35页 |
2.1.2 B6.Cg-Tg(Lck-cre) 548Jxm/NJU | 第35页 |
2.1.3 小鼠的饲养和生长环境 | 第35页 |
2.1.4 小鼠基因型的鉴定和繁殖策略 | 第35-36页 |
2.2 主要试剂 | 第36-38页 |
2.3 主要试剂的配制方法 | 第38-44页 |
2.4 主要仪器设备 | 第44-46页 |
2.5 实验方法 | 第46-59页 |
2.5.1 鼠尾DNA提取实验方法 | 第46页 |
2.5.2 PCR反应 | 第46-47页 |
2.5.3 胸腺、脾和淋巴结细胞的分离 | 第47-48页 |
2.5.4 外周血淋巴细胞分离 | 第48页 |
2.5.5 细胞计数 | 第48页 |
2.5.6 分离细胞实验前处理 | 第48-49页 |
2.5.7 T淋巴细胞转化实验(MTT法) | 第49页 |
2.5.8 逆转录-聚合酶链反应(Reverse transcription-polymerase chain reaction,RT-PCR) | 第49-51页 |
2.5.9 逆转录实时定量聚合酶链反应(Reverse transcription-real timequantitative polymerase chain reaction, RT-qPCR) | 第51-52页 |
2.5.10 Western blot | 第52-56页 |
2.5.11 流式细胞术(Flow cytometry,FCM) | 第56-57页 |
2.5.12 BAP31敲除后小鼠Lewis肺癌模型建立 | 第57-58页 |
2.5.13 统计学分析 | 第58-59页 |
第3章 实验结果 | 第59-85页 |
3.1 BAP31通过TCR信号参与T细胞活化 | 第59-81页 |
3.1.1 实验动物的繁殖与鉴定 | 第59-61页 |
3.1.2 小鼠胸腺T细胞中BAP31的表达水平 | 第61-62页 |
3.1.3 BAP31参与胸腺细胞的发育 | 第62-65页 |
3.1.4 BAP31调节效应/记忆T细胞 | 第65-68页 |
3.1.5 BAP31参与外周T淋巴细胞的成熟 | 第68-70页 |
3.1.6 BAP31调节T细胞活化 | 第70-72页 |
3.1.7 BAP31影响TCR信号通路中主要成员的活化 | 第72-73页 |
3.1.8 BAP31调节TCR信号通路下游成员的活化 | 第73-78页 |
3.1.9 BAP31通过调节T细胞活化相关分子的表达水平影响TCR信号传递 | 第78-81页 |
3.2 BAP31对Lewis肺癌模型小鼠免疫功能的影响 | 第81-85页 |
3.2.1 BAP31对Lewis肺癌模型小鼠体重的影响 | 第81页 |
3.2.2 BAP31对Lewis肺癌模型小鼠肿瘤体积、瘤重的影响 | 第81-82页 |
3.2.3 BAP31对Lewis肺癌模型小鼠NK细胞杀伤功能的影响 | 第82-83页 |
3.2.4 BAP31对Lewis肺癌模型小鼠CD4~+T细胞、CD8~+T细胞数量的影响 | 第83-84页 |
3.2.5 BAP31对Lewis肺癌模型小鼠T、B细胞增殖功能的影响 | 第84-85页 |
第4章 讨论 | 第85-90页 |
第5章 总结与展望 | 第90-91页 |
参考文献 | 第91-105页 |
致谢 | 第105-106页 |
攻读博士学位期间取得的学术成果 | 第106-107页 |
个人简介 | 第107页 |