中文摘要 | 第1-15页 |
英文摘要 | 第15-22页 |
缩略词 | 第22-23页 |
第一章 文献综述 | 第23-61页 |
·植物离体器官发生 | 第23-32页 |
·植物离体器官发生的研究过程 | 第23-24页 |
·植物细胞全能性 | 第24页 |
·植物细胞全能性的提出 | 第24-25页 |
·离体植株再生途径 | 第25-27页 |
·体细胞胚发生途径 | 第25-26页 |
·离体器官发生途径 | 第26-27页 |
·模式植物拟南芥离体器官发生 | 第27页 |
·离体器官发生相关基因的鉴别 | 第27-31页 |
·植物激素对离体器官发生的影响 | 第31-32页 |
·表观遗传对离体器官发生和愈伤组织形成的影响 | 第32页 |
·植物干细胞 | 第32-43页 |
·植物茎尖分生组织(SAM)的形成及组织学特征 | 第33-34页 |
·植物茎尖生长点干细胞维持 | 第34-37页 |
·植物生根尖分生组织(RAM)的形成与特征 | 第37页 |
·植物根尖生长点干细胞的维持 | 第37-38页 |
·植物干细胞的分化和器官发生 | 第38-39页 |
·植物器官的形态建成 | 第39-40页 |
·植物激素在干细胞维持与分化中的作用 | 第40-42页 |
·植物干细胞的表观遗传学研究 | 第42-43页 |
·MYB转录因子 | 第43-51页 |
·MYB转录因子成员及分类 | 第43-44页 |
·R2R3-MYB转录因子的作用 | 第44-51页 |
·调节植物细胞的命运和身份确定 | 第44-45页 |
·R2R3-MYB蛋白对拟南芥的发育的调控 | 第45-47页 |
·R2R3-MYB参与拟南芥根发育的调控 | 第47-49页 |
·参与对植物激素的应答 | 第49页 |
·参与调控植物逆境胁迫 | 第49-51页 |
·MicroRNA | 第51-58页 |
·MiRNA的生物合成 | 第51-52页 |
·植物miRNA的作用机制 | 第52-53页 |
·miRNAs在拟南芥发育中的功能 | 第53-56页 |
·MiRNAs功能的研究方法 | 第56页 |
·MiRNA表达检测技术进展 | 第56-58页 |
·Northern杂交 | 第56-57页 |
·基因芯片 | 第57页 |
·原位杂交 | 第57页 |
·半定量RT-PCR | 第57-58页 |
·实时定量PCR | 第58页 |
·研究目的及立题意义 | 第58-61页 |
第二章 拟南芥miRNAs在离体苗再生和细胞增殖中的功能研究 | 第61-109页 |
前言 | 第61页 |
1 实验材料 | 第61-65页 |
2 实验方法 | 第65-82页 |
3 结果与分析 | 第82-105页 |
·拟南芥胚性与非胚性愈伤组织的获得 | 第82-83页 |
·拟南芥胚性与非胚性愈伤组织的组织学特征 | 第83-84页 |
·胚性愈伤组织C1与非胚性愈伤组织C2miRNAs表达谱分析 | 第84-86页 |
·C1和C2的RNA提取及质量检测 | 第84-85页 |
·芯片检测结果 | 第85页 |
·C1和C2中的miRNAs表达差异比较分析 | 第85-86页 |
·芯片结果的验证 | 第86-87页 |
·候选miRNAs的靶基因在C1和C2中的表达模式 | 第87-89页 |
·miRNAs在愈伤组织形成、离体苗及根再生过程中的表达模式 | 第89-92页 |
·miRNAs在CIM、SIM及RIM培养早期的表达模式 | 第89-90页 |
·miRNAs在CIM及SIM延长培养过程中的表达模式 | 第90-91页 |
·pmiR859-miR774::GUS转基因植株的GUS表达模式分析 | 第91-92页 |
·在C1中高表达的miRNAs在植株体内的表达模式 | 第92-93页 |
·候选miRNAs对拟南芥离体苗再生的影响 | 第93-95页 |
·过表达miR160a抑制离体苗的再生 | 第95页 |
·mARF10显著提高离体苗的再生能力 | 第95-97页 |
·ARF10在离体苗再生中的表达模式 | 第97-98页 |
·ARF10影响离体苗再生能力的可能机制 | 第98-102页 |
·离体苗再生相关基因在体内的表达模式 | 第98-100页 |
·离体苗再生相关基因在体外根培养物中的表达模式 | 第100-102页 |
·候选miRNAs对体外细胞增殖的影响 | 第102-104页 |
·MiRNAs在体外细胞增殖过程中的表达模式 | 第104-105页 |
4 讨论 | 第105-109页 |
第三章 生长素受体基因TIR1对离体苗再生的作用 | 第109-121页 |
前言 | 第109页 |
1 实验材料 | 第109页 |
2 实验方法 | 第109-111页 |
3 结果与分析 | 第111-118页 |
·TIR1在体外培养条件下的表达模式 | 第111-112页 |
·TIR1在不同的培养基上的表达模式 | 第112-113页 |
·TIR1在植株体内的时空表达模式 | 第113-114页 |
·TIR1对体外离体苗再生的影响 | 第114-115页 |
·延长CIM培养不能恢复tir1-1离体苗再生能力的降低 | 第115-116页 |
·TIR1对体外细胞增殖的影响 | 第116-117页 |
·TIR1影响离体苗再生的可能机制 | 第117-118页 |
4 讨论 | 第118-121页 |
第四章 拟南芥MYB96转录因子调控体外细胞增殖及离体苗再生 | 第121-148页 |
前言 | 第121页 |
1 实验材料 | 第121-122页 |
2 实验方法 | 第122-127页 |
3 实验结果 | 第127-146页 |
·MYB96过表达系及敲除系的分离及表型 | 第127-128页 |
·MYB96在体外培养过程中的表达模式 | 第128-129页 |
·MYB96在愈伤组织形成过程中的表达模式 | 第129-131页 |
·MYB96在体外离体苗再生中的表达模式 | 第131-132页 |
·MYB96对体外细胞增殖的作用 | 第132-133页 |
·MYB96对体外离体苗再生的作用 | 第133-134页 |
·MYB96对体外离体根再生的作用 | 第134-135页 |
·MYB96影响体外细胞增殖、离体苗和根再生的可能机制 | 第135-143页 |
·细胞增殖相关基因在Col-0、myb96-1d和myb96-1中表达分析 | 第135-139页 |
·细胞分裂标记基因CYCB1;1的表达变化 | 第135-137页 |
·DR5的表达变化 | 第137-139页 |
·离体苗再生相关基因在Col-0、myb96-1d和myb96-1表达分析 | 第139-140页 |
·myb96-1d离体根再生能力下降的可能原因 | 第140-143页 |
·RT-PCR分析 | 第140页 |
·MYB96高表达影响根分生组织的维持 | 第140-143页 |
·与MYB96直接结合的下游目标基因的发掘 | 第143-146页 |
·ChIP分析 | 第143-144页 |
·ChIP-sequence分析 | 第144-146页 |
4 讨论 | 第146-148页 |
第五章 MYB96调控干旱条件下的侧根发育 | 第148-175页 |
前言 | 第148页 |
1 实验材料 | 第148-149页 |
2 实验方法 | 第149-153页 |
3 实验结果 | 第153-172页 |
·MYB96突变体表型分析 | 第153-154页 |
·MYB96的表达模式分析 | 第154-158页 |
·亚细胞定位 | 第154-155页 |
·时空表达模式分析 | 第155-156页 |
·非生物胁迫对拟南芥MYB96表达的影响 | 第156-157页 |
·各种植物激素对拟南芥MYB96的表达的影响 | 第157-158页 |
·MYB96调控ABA介导的拟南芥干旱胁迫耐受性 | 第158-163页 |
·过表达MYB96能够提高逆南芥的干旱耐受性 | 第158-159页 |
·回复验证 | 第159-160页 |
·myb96-1d和myb96-1叶片气孔对ABA处理的响应 | 第160-161页 |
·MYB96通过ABA依赖途径中的RD22调控拟南芥干旱胁迫耐受 | 第161-163页 |
·ABA处理对myb96-1d和myb96-1发芽率的影响 | 第163-164页 |
·MYB96调控侧根发育 | 第164-172页 |
·ABA处理对myb96-1d和myb96-1侧根发育的影响 | 第164-165页 |
·IAA在根组织中特异性的诱导MYB96的表达 | 第165-167页 |
·侧根发生或发育相关基因在myb96-1d和myb96-1中的表达模式 | 第167-168页 |
·外源生长素处理条件下上述候选基因的表达变化情况 | 第168-169页 |
·MYB96介导的ABA信号通过GH3整合进入了生长素信号途径 | 第169-170页 |
·myb96-1d侧根减少的表型不能够被外源生长素完全恢复 | 第170-172页 |
4 讨论 | 第172-175页 |
论文创新点 | 第175-177页 |
参考文献 | 第177-198页 |
附表1 本研究中用到的部分引物(5’-3’) | 第198-200页 |
附图1 ARF10对KT和2-IP的响应 | 第200-201页 |
研究生期间发表的论文情况 | 第201-203页 |
致谢 | 第203-205页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第205页 |