| 摘要 | 第7-10页 |
| abstract | 第10-14页 |
| 缩略语表 | 第15-16页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 第一章 不同来源的花色苷提取物的成分分析和结构鉴定 | 第18-38页 |
| 引言 | 第18页 |
| 1 材料 | 第18-20页 |
| 1.1 实验材料 | 第18-20页 |
| 1.2 主要试剂及耗材 | 第20页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第20页 |
| 2 方法 | 第20-23页 |
| 2.1 Folin-Ciocalteu比色法测定样品总酚酸含量 | 第20-21页 |
| 2.2 NaNo_2-Al(No_3)_3比色法测样品总黄酮含量 | 第21页 |
| 2.3 pH示差法测样品总花色苷含量 | 第21-22页 |
| 2.4 HPLC液相比较1-12号样品 | 第22页 |
| 2.5 利用UPLC分析4-12号样品化学结构 | 第22-23页 |
| 2.6 统计学分析 | 第23页 |
| 3 结果与分析 | 第23-37页 |
| 3.1 十二种花色苷提取物的总酚酸含量 | 第23-25页 |
| 3.2 十二种花色苷提取物的总黄酮含量 | 第25-26页 |
| 3.3 十二种花色苷提取物的总花色苷含量 | 第26页 |
| 3.4 十二种花色苷提取物的HPLC液相图比较 | 第26-31页 |
| 3.5 不同花色苷提取物的UPLC液相图比较 | 第31页 |
| 3.6 不同花色苷提取物的化学结构的鉴定 | 第31-37页 |
| 4 讨论和小结 | 第37-38页 |
| 第二章 不同来源花色苷对糖脂消化关键酶抑制活性的筛选 | 第38-69页 |
| 引言 | 第38-39页 |
| 第一节 不同来源花色苷样品对糖脂消化吸收关键酶的活性影响 | 第39-45页 |
| 1 材料与方法 | 第39-42页 |
| 1.1 主要试剂及耗材 | 第39页 |
| 1.2 主要实验仪器和用具 | 第39页 |
| 1.3 十二种不同来源花色苷提取物对α-淀粉酶的活性影响 | 第39-40页 |
| 1.4 十二种不同来源花色苷提取物对脂肪酶的活性影响 | 第40-41页 |
| 1.5 不同来源花色苷提取物对α-葡萄糖苷酶的活性影响 | 第41-42页 |
| 1.6 统计分析 | 第42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-45页 |
| 2.1 不同来源花色苷提取物对α-淀粉酶体外抑制作用 | 第42-43页 |
| 2.2 十二种不同来源花色苷提取物对脂肪酶体外抑制作用 | 第43-44页 |
| 2.3 十二种不同来源花色苷提取物对α-葡萄糖苷酶的活性影响 | 第44-45页 |
| 第二节 半制备型HPLC分离1-3号样品片段和结构鉴定 | 第45-61页 |
| 1 材料与方法 | 第45-47页 |
| 1.1 主要试剂及耗材 | 第45页 |
| 1.2 主要实验仪器和用具 | 第45-46页 |
| 1.3 半制备高效液相条件 | 第46页 |
| 1.4 UPLC-QTOF-MS/MS条件 | 第46-47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-61页 |
| 2.1 半制备HPLC分离1-3号样品辅色素片段和花色苷片段 | 第47-48页 |
| 2.2 从1-3号样品分离得到辅色素片段和花色苷片段液相图比较 | 第48-50页 |
| 2.3 花色苷片段质谱分析 | 第50-52页 |
| 2.4 辅色素质谱分析 | 第52-61页 |
| 第三节 筛选抑制α-葡萄糖苷酶的有效成分 | 第61-67页 |
| 1 材料与方法 | 第61-62页 |
| 1.1 主要试剂及耗材 | 第61页 |
| 1.2 主要实验仪器和用具 | 第61页 |
| 1.3 样品对α-葡萄糖苷酶的IC50值测定 | 第61页 |
| 1.4 样品对α-葡萄糖苷酶抑制的可逆性实验 | 第61-62页 |
| 1.5 样品对α-葡萄糖苷酶体外抑制动力学的测定 | 第62页 |
| 1.6 统计分析 | 第62页 |
| 2 结果与分析 | 第62-67页 |
| 2.1 1-3样品及不同片段对α-葡萄糖苷酶的抑制比较 | 第62-64页 |
| 2.2 8号和10号样品及不同片段对α-葡萄糖苷酶的IC50 | 第64-65页 |
| 2.3 10号样品对α-葡萄糖苷酶的体外抑制可逆性 | 第65-66页 |
| 2.4 样品对α-葡萄糖苷酶的体外抑制动力学 | 第66-67页 |
| 第四节 讨论和小结 | 第67-69页 |
| 第三章 不同来源花色苷样品促进hepg2细胞葡萄糖消耗活性评价 | 第69-80页 |
| 引言 | 第69页 |
| 1 材料 | 第69-71页 |
| 1.1 实验材料 | 第69-70页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第70页 |
| 1.3 试剂配制 | 第70-71页 |
| 2 方法 | 第71-74页 |
| 2.1 细胞培养 | 第71-72页 |
| 2.1.1 细胞培养条件 | 第71页 |
| 2.1.2 细胞复苏 | 第71页 |
| 2.1.3 细胞传代 | 第71页 |
| 2.1.4 细胞冻存 | 第71-72页 |
| 2.2 MTT法检测胰岛素对细胞增殖活力的影响 | 第72页 |
| 2.3 1-3号样品对HepQ2细胞葡萄糖消耗的影响 | 第72-73页 |
| 2.4 HepQ2胰岛素抵抗模型的建立 | 第73页 |
| 2.5 1-3号样品对HepQ2胰岛素抵抗模型的糖消耗影响 | 第73页 |
| 2.6 统计分析 | 第73-74页 |
| 3 实验结果 | 第74-79页 |
| 3.1 1-3号样品对HepG2细胞活力的影响 | 第74-75页 |
| 3.2 胰岛素和葡萄糖对HepG2细胞增殖的影响 | 第75页 |
| 3.3 HepG2细胞胰岛素抵抗模型的摸索 | 第75-76页 |
| 3.4 HepG2/IR细胞的形态学变化 | 第76-77页 |
| 3.5 1-3号样品对正常HepG2细胞葡萄糖消耗的影响 | 第77页 |
| 3.6 花色苷样品对胰岛素抵抗HepQ2细胞葡萄糖消耗的影响 | 第77-79页 |
| 4 讨论及小结 | 第79-80页 |
| 第四章 花色苷提取物对小鼠体内降脂作用评价 | 第80-92页 |
| 引言 | 第80页 |
| 1 材料 | 第80-81页 |
| 1.1 实验材料 | 第80-81页 |
| 1.2 实验动物 | 第81页 |
| 2 方法 | 第81-83页 |
| 2.1 肥胖模型的诱导及分组设计 | 第81-82页 |
| 2.2 血清胆固醇指标的测定 | 第82页 |
| 2.3 肝脏胆固醇指标的测定 | 第82页 |
| 2.4 粪便TC及总胆汁酸(TBA)的测定 | 第82页 |
| 2.5 统计学分析 | 第82-83页 |
| 3 结果与分析 | 第83-91页 |
| 3.1 5号样品对肥胖小鼠饮食量和体重的影响 | 第83-84页 |
| 3.2 5号样品对肥胖小鼠血清TC、IDL-C、HDL-C含量的影响 | 第84-85页 |
| 3.3 5号样品对肥胖小鼠肝重、附睾脂肪、肾周脂肪重量及其脏器指数的影响 | 第85-86页 |
| 3.4 5号样品对肥胖小鼠肝脏TC、IDL-C、HDL-C含量的影响 | 第86页 |
| 3.5 5号样品对肥胖小鼠粪便中胆固醇及总胆汁酸含量的影响 | 第86-88页 |
| 3.6 5号样品对肥胖小鼠空腹血糖的影响 | 第88-89页 |
| 3.7 5号样品对肥胖小鼠肝脏形态学的影响 | 第89-91页 |
| 4 讨论 | 第91-92页 |
| 结语与创新 | 第92-93页 |
| 附录 蓝莓花色苷提取物作为膳食功能因子文献综述 | 第93-98页 |
| 参考文献 | 第98-105页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106页 |
