| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 本文所用英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 引言 | 第11页 |
| 1.2 缺氧和肿瘤细胞 | 第11-14页 |
| 1.2.1 缺氧和缺氧诱导因子 | 第12页 |
| 1.2.2 缺氧在生物体代谢调节及肿瘤发生等方面的功能与分析 | 第12-14页 |
| 1.3 荧光生物传感器 | 第14-20页 |
| 1.3.1 荧光的基本理论和荧光生物传感器的基本组成 | 第14-16页 |
| 1.3.2 核酸纳米探针在荧光传感器的应用 | 第16-20页 |
| 1.4 本论文的选题背景及拟开展的研究内容 | 第20-22页 |
| 第2章 基于两步识别的方法实现细胞内葡萄糖高选择性成像检测 | 第22-38页 |
| 2.1 前言 | 第22页 |
| 2.2 实验部分 | 第22-26页 |
| 2.2.1 试剂和仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.2 Shinkai's受体的合成 | 第23-24页 |
| 2.2.3 13nm金纳米颗粒的合成 | 第24页 |
| 2.2.4 金颗粒表面上修饰CP序列 | 第24-25页 |
| 2.2.5 包含Shinkai's受体的脂质体的制备 | 第25页 |
| 2.2.6 体外葡萄糖的检测 | 第25页 |
| 2.2.7 细胞裂解液的制备 | 第25页 |
| 2.2.8 细胞毒性试验 | 第25-26页 |
| 2.2.9 细胞内葡萄糖成像 | 第26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-37页 |
| 2.3.1 实验设计机理 | 第26-27页 |
| 2.3.2 Shinkai's受体的表征 | 第27-28页 |
| 2.3.3 AuNPs,AuNP@ODs,葡萄糖纳米传感器的的表征 | 第28-30页 |
| 2.3.4 葡萄糖的体外响应 | 第30-31页 |
| 2.3.5 葡萄糖的选择性 | 第31-32页 |
| 2.3.6 细胞毒性实验 | 第32-33页 |
| 2.3.7 葡萄糖在细胞内的生物成像 | 第33-36页 |
| 2.3.8 葡萄糖纳米传感器的应用 | 第36-37页 |
| 2.4 小结 | 第37-38页 |
| 第3章 结合偶氮还原酶对缺氧条件下细胞内Cyt c动态释放的成像研究 | 第38-54页 |
| 3.1 前言 | 第38-39页 |
| 3.2 实验部分 | 第39-41页 |
| 3.2.1 试剂和仪器 | 第39页 |
| 3.2.2 AuNPs-βCD的制备 | 第39-40页 |
| 3.2.3 核酸纳米传感器的形成 | 第40页 |
| 3.2.4 偶氮键的断裂和双链结构的释放 | 第40页 |
| 3.2.5 溶液相中Cyt c的检测 | 第40页 |
| 3.2.6 细胞毒性实验 | 第40页 |
| 3.2.7 缺氧条件下Cyt c的细胞成像 | 第40-41页 |
| 3.2.8 缺氧条件下Caspase-3的细胞成像 | 第41页 |
| 3.2.9 不同氧气浓度下Cyt c的细胞成像 | 第41页 |
| 3.2.10 流式细胞仪实验 | 第41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-53页 |
| 3.3.1 设计原理 | 第41-42页 |
| 3.3.2 核酸纳米传感器的表征 | 第42-43页 |
| 3.3.3 可行性考察 | 第43-44页 |
| 3.3.4 反应条件的考察 | 第44-45页 |
| 3.3.5 Cyt c的体外响应 | 第45-46页 |
| 3.3.6 Cyt c细胞成像的可行性分析 | 第46-48页 |
| 3.3.7 缺氧条件下Cyt c细胞成像的条件优化 | 第48-49页 |
| 3.3.8 缺氧条件下活细胞中Cyt c释放的荧光监测 | 第49-51页 |
| 3.3.9 不同缺氧环境下Cyt c的细胞成像 | 第51页 |
| 3.3.10 缺氧条件下Cyt c释放后的凋亡信号通路 | 第51-53页 |
| 3.3.11 流式细胞分析实验 | 第53页 |
| 3.4 小结 | 第53-54页 |
| 结论与展望 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-65页 |
| 附录A 攻读硕士期间所发表的学术论文 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
