| 摘要 | 第11-14页 |
| ABSTRACT | 第14-17页 |
| 符号及缩略语 | 第18-19页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-37页 |
| 1 硒及硒多糖的研究进展 | 第19-21页 |
| 1.1 硒的生物功能 | 第19-20页 |
| 1.2 硒多糖的生物功能 | 第20-21页 |
| 2 黄芪多糖的研究进展 | 第21-23页 |
| 2.1 黄芪多糖的组成 | 第21页 |
| 2.2 黄芪多糖的提取及含量测定 | 第21-22页 |
| 2.3 黄芪多糖的生物功能 | 第22-23页 |
| 3 白术多糖的研究进展 | 第23-26页 |
| 3.1 白术多糖的组成 | 第23-24页 |
| 3.2 白术多糖的提取和纯化 | 第24页 |
| 3.3 白术多糖的生物活性 | 第24-26页 |
| 4 本研究的选题和目的意义 | 第26-27页 |
| 参考文献 | 第27-37页 |
| 第二章 黄芪多糖和白术多糖的提取和纯化 | 第37-43页 |
| 1 材料与方法 | 第37-39页 |
| 1.1 试验药物 | 第37页 |
| 1.2 主要试剂 | 第37页 |
| 1.3 主要仪器 | 第37-38页 |
| 1.4 多糖的提取 | 第38页 |
| 1.5 多糖的分离纯化 | 第38页 |
| 1.6 多糖含量测定 | 第38-39页 |
| 2 结果 | 第39-40页 |
| 2.1 黄芪多糖的提取和纯化 | 第39页 |
| 2.2 白术多糖的提取和纯化 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40-41页 |
| 3.1 多糖的提取 | 第40页 |
| 3.2 多糖的纯化 | 第40-41页 |
| 3.3 糖含量测定 | 第41页 |
| 参考文献 | 第41-43页 |
| 第三章 黄芪多糖和白术多糖增强免疫活性部位的筛选 | 第43-51页 |
| 1 材料与方法 | 第43-45页 |
| 1.1 多糖的准备 | 第43-44页 |
| 1.2 主要试剂 | 第44页 |
| 1.3 主要仪器 | 第44页 |
| 1.4 试验方法 | 第44-45页 |
| 1.5 数据分析 | 第45页 |
| 2 结果 | 第45-49页 |
| 2.1 黄芪多糖对鸡外周血淋巴细胞的最大安全浓度 | 第45页 |
| 2.2 白术多糖对鸡外周血淋巴细胞的最大安全浓度 | 第45-46页 |
| 2.3 黄芪多糖多糖单独作用时淋巴细胞增殖的变化 | 第46-47页 |
| 2.4 白术多糖单独作用对淋巴细胞增殖的变化 | 第47页 |
| 2.5 黄芪多糖与PHA共同作用时淋巴细胞增殖的变化 | 第47-48页 |
| 2.6 白术多糖与PHA共同作用时淋巴细胞增殖的变化 | 第48-49页 |
| 3 讨论 | 第49-50页 |
| 3.1 两种多糖单独作用于淋巴细胞的影响 | 第49页 |
| 3.2 两种多糖协同PHA作用于淋巴细胞的影响 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-51页 |
| 第四章 黄芪多糖和白术多糖抗氧化活性部位的筛选 | 第51-59页 |
| 1 材料与方法 | 第51-53页 |
| 1.1 多糖准备 | 第51页 |
| 1.2 主要试剂 | 第51-52页 |
| 1.3 主要仪器 | 第52页 |
| 1.4 羟自由基清除试验 | 第52页 |
| 1.5 DPPH自由基清除试验 | 第52页 |
| 1.6 超氧阴离子自由基清除试验 | 第52-53页 |
| 1.7 数据分析 | 第53页 |
| 2 结果 | 第53-56页 |
| 2.1 APS和AMP清除羟自由基的能力 | 第53-54页 |
| 2.2 APS和AMP清除DPPH自由基的能力 | 第54-55页 |
| 2.3 APS和AMP清除超氧阴离子自由基的能力 | 第55-56页 |
| 3 讨论 | 第56-57页 |
| 3.1 APS和AMP对羟自由基的清除能力 | 第56页 |
| 3.2 APS与AMP对DPPH自由基的清除能力 | 第56页 |
| 3.3 APS与AMP对清除超氧阴离子能力的影响 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-59页 |
| 第五章 黄芪多糖和白术多糖的硒化修饰 | 第59-67页 |
| 1 材料与方法 | 第59-61页 |
| 1.1 多糖准备 | 第59页 |
| 1.2 主要试剂 | 第59-60页 |
| 1.3 主要仪器 | 第60页 |
| 1.4 多糖的硒化 | 第60页 |
| 1.5 多糖的鉴定 | 第60-61页 |
| 2 结果 | 第61-64页 |
| 2.1 硒化白术多糖的得率、糖含量和硒含量 | 第61页 |
| 2.2 硒化黄芪多糖得率、糖含量和硒含量 | 第61-62页 |
| 2.3 硒化白术多糖的红外光谱 | 第62页 |
| 2.4 硒化黄芪多糖的红外光谱 | 第62-64页 |
| 3 讨论 | 第64-65页 |
| 3.1 多糖的硒化修饰方法及硒含量测定 | 第64-65页 |
| 3.2 硒化多糖红外光谱结构鉴定 | 第65页 |
| 参考文献 | 第65-67页 |
| 第六章 硒化黄芪多糖和硒化白术多糖体外增强免疫活性的比较 | 第67-79页 |
| 1 材料与方法 | 第67-68页 |
| 1.1 多糖准备 | 第67页 |
| 1.2 主要试剂及配制 | 第67-68页 |
| 1.3 主要仪器 | 第68页 |
| 1.4 试验方法 | 第68页 |
| 1.5 数据分析 | 第68页 |
| 2 结果 | 第68-76页 |
| 2.1 硒化黄芪多糖对鸡外周血淋巴细胞的安全浓度 | 第68-69页 |
| 2.2 硒化白术多糖对鸡外周血淋巴细胞的安全浓度 | 第69-70页 |
| 2.3 硒化黄芪多糖单独刺激时淋巴细胞增殖的变化 | 第70-72页 |
| 2.4 硒化白术多糖单独刺激时淋巴细胞增殖的变化 | 第72-73页 |
| 2.5 硒化黄芪多糖与PHA共同刺激时淋巴细胞增殖的变化 | 第73-75页 |
| 2.6 硒化白术多糖与PHA共同刺激时淋巴细胞增殖的变化 | 第75-76页 |
| 3 讨论 | 第76-77页 |
| 3.1 硒化黄芪多糖对淋巴细胞增殖的影响 | 第76页 |
| 3.2 硒化白术多糖对淋巴细胞增殖的影响 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-79页 |
| 第七章 硒化黄芪多糖和硒化白术多糖体外抗氧化活性的比较 | 第79-91页 |
| 1 材料与方法 | 第79-80页 |
| 1.1 多糖准备 | 第79-80页 |
| 1.2 主要试剂 | 第80页 |
| 1.3 主要仪器 | 第80页 |
| 1.4 清除DPPH自由基试验 | 第80页 |
| 1.5 清除羟自由基试验 | 第80页 |
| 1.6 清除ABTS自由基试验 | 第80页 |
| 2 结果 | 第80-88页 |
| 2.1 硒化黄芪多糖对DPPH自由基的清除能力 | 第80-82页 |
| 2.2 硒化白术多糖对DPPH自由基的清除能力 | 第82-83页 |
| 2.3 硒化黄芪多糖清除羟自由基的能力 | 第83-84页 |
| 2.4 硒化白术多糖清除羟自由基的能力 | 第84-86页 |
| 2.5 硒化黄芪多糖清除ABTS自由基的能力 | 第86-87页 |
| 2.6 硒化白术多糖清除ABTS自由基的能力 | 第87-88页 |
| 3 讨论 | 第88-89页 |
| 3.1 sAPSs和sAMPs对DPPH自由基的清除能力 | 第88页 |
| 3.2 sAPSs和sAMPs对羟自由基的清除能力 | 第88页 |
| 3.3 sAPSs和sAMPs对清除ABTS自由基能力的影响 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-91页 |
| 第八章 硒化黄芪多糖和硒化白术多糖体内增强免疫活性的比较 | 第91-99页 |
| 1 材料与方法 | 第91-93页 |
| 1.1 多糖准备 | 第91-92页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第92页 |
| 1.3 动物分组与处理 | 第92页 |
| 1.4 血清抗体效价测定 | 第92页 |
| 1.5 淋巴细胞增殖测定 | 第92页 |
| 1.6 血清IL-2、IL-6和IFN-γ的含量测定 | 第92页 |
| 1.7 数据分析 | 第92-93页 |
| 2 结果 | 第93-96页 |
| 2.1 血清抗体效价的变化 | 第93页 |
| 2.2 淋巴细胞增殖的变化 | 第93-94页 |
| 2.3 IL-2含量的变化 | 第94-95页 |
| 2.4 IFN-γ含量的变化 | 第95页 |
| 2.5 IL-6含量的变化 | 第95-96页 |
| 3 讨论 | 第96-97页 |
| 3.1 硒化黄芪多糖和硒化白术多糖对细胞免疫的影响 | 第96页 |
| 3.2 硒化黄芪多糖和硒化白术多糖对体液免疫的影响 | 第96页 |
| 3.3 硒化黄芪多糖和硒化白术多糖对细胞因子的影响 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-99页 |
| 第九章 硒化黄芪多糖和硒化白术多糖体内抗氧化活性的比较 | 第99-105页 |
| 1 材料与方法 | 第99-100页 |
| 1.1 多糖准备 | 第99页 |
| 1.2 新城疫疫苗 | 第99页 |
| 1.3 试剂盒和仪器 | 第99-100页 |
| 1.4 动物分组与处理 | 第100页 |
| 1.5 血清SOD、CAT、GSH-PX和MDA含量的测定 | 第100页 |
| 1.6 数据分析 | 第100页 |
| 2 结果 | 第100-102页 |
| 2.1 SOD活性的变化 | 第100-101页 |
| 2.2 CAT活性变化 | 第101页 |
| 2.3 GSH-Px活性变化 | 第101-102页 |
| 2.4 MDA含量的变化 | 第102页 |
| 3 讨论 | 第102-104页 |
| 3.1 硒化多糖对血清SOD活性的影响 | 第102-103页 |
| 3.2 硒化多糖对血清CAT活性的影响 | 第103页 |
| 3.3 硒化多糖对血清GSH-Px含量影响 | 第103页 |
| 3.4 硒化多糖对血清MDA含量影响 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-105页 |
| 全文总结 | 第105-107页 |
| 论文创新点 | 第107-109页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第109-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
