| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 缩略词 | 第12-16页 |
| 第1章 绪论 | 第16-20页 |
| 第2章 材料与方法 | 第20-34页 |
| 2.1 材料 | 第20-22页 |
| 2.1.1 细胞 | 第20页 |
| 2.1.2 小鼠 | 第20页 |
| 2.1.3 试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-34页 |
| 2.2.1 患者样品和临床数据 | 第22-23页 |
| 2.2.2 DADS诱导HL-60细胞分化模型的建立及检测 | 第23-24页 |
| 2.2.3 重症联合免疫缺陷(SCID)小鼠成瘤 | 第24-25页 |
| 2.2.4 逆转录定量聚合酶链式反应(RT-qPCR) | 第25-27页 |
| 2.2.5 ROS水平的测量 | 第27-28页 |
| 2.2.6 RNA免疫沉淀(RIP) | 第28-31页 |
| 2.2.7 免疫荧光 | 第31-32页 |
| 2.2.8 Westernblot实验方法 | 第32-33页 |
| 2.2.9 数据分析 | 第33-34页 |
| 第3章 结果 | 第34-48页 |
| 3.1 CRT和C/EBPα在白血病患者外周血白细胞中的表达及相关性研究 | 第34-36页 |
| 3.1.1 骨髓的瑞氏染色检验 | 第34-35页 |
| 3.1.2 FCM检测临床样本白细胞内CRT和C/EBPα的表达 | 第35-36页 |
| 3.2 CRT和C/EBPα在DADS诱导分化的HL-60细胞中的差异表达 | 第36-39页 |
| 3.2.1 HE染色检测DADS诱导HL-60细胞分化 | 第36-37页 |
| 3.2.2 RT-PCR检测CRT和C/EBPαmRNA的表达 | 第37-38页 |
| 3.2.3 Westernblot检测HL-60细胞内CRT和C/EBPα的表达 | 第38-39页 |
| 3.3 DADS抑制SCID小鼠的肿瘤生长,调节CRT和C/EBPα的表达 | 第39-42页 |
| 3.3.1 DADS抑制SCID小鼠的肿瘤生长 | 第39-41页 |
| 3.3.2 瑞氏染色检测肿瘤切片 | 第41页 |
| 3.3.3 Westernblot检测肿瘤组织中蛋白CRT和C/EBPα的表达 | 第41-42页 |
| 3.4 DADS通过ROS-PI3K/AKT信号通路诱导CRT下调和易位 | 第42-45页 |
| 3.4.1 免疫荧光检测细胞内CRT蛋白的定位 | 第42-43页 |
| 3.4.2 FCM检测ROS水平 | 第43-44页 |
| 3.4.3 Westernblot检测DADS处理组和NAC+DADS处理组中CRT和C/EBPα的表达 | 第44页 |
| 3.4.4 Westernblot检测ROS-PI3K/AKT信号通路相关蛋白表达 | 第44-45页 |
| 3.5 DADS下调CRT促进C/EBPαmRNA的翻译诱导的HL-60细胞分化.. | 第45-48页 |
| 3.5.1 Westernblot检测细胞内CRT表达变化 | 第45-46页 |
| 3.5.2 RNA免疫共沉淀 | 第46-47页 |
| 3.5.3 RT-PCR检测C/EBPαmRNA的含量 | 第47-48页 |
| 第4章 讨论 | 第48-52页 |
| 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第60-62页 |
| 文献综述 | 第62-94页 |
| References | 第77-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
