摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩略词和术语表 | 第16-17页 |
第1章 绪论 | 第17-22页 |
1.1 课题背景 | 第17-20页 |
1.1.1 卤虫概况 | 第17-18页 |
1.1.2 细胞静息与休眠 | 第18-19页 |
1.1.3 miRNA的研究概况 | 第19-20页 |
1.1.4 miR-100与细胞周期相关蛋白的相互作用 | 第20页 |
1.2 前期研究 | 第20-22页 |
第2章 miRNA在卤虫卵生发育过程中的表达谱 | 第22-53页 |
2.1 引言 | 第22-23页 |
2.2 材料 | 第23-24页 |
2.2.1 实验材料 | 第23页 |
2.2.2 主要试剂 | 第23页 |
2.2.3 主要仪器 | 第23-24页 |
2.3 方法 | 第24-25页 |
2.3.1 总RNA的提取 | 第24-25页 |
2.4 结果 | 第25-52页 |
2.4.1 READS质量预处理 | 第25-28页 |
2.4.2 序列注释和鉴定已知miRNA | 第28-30页 |
2.4.3 Conversed miRNA分析 | 第30-48页 |
2.4.4 miRNA差异表达分析 | 第48-52页 |
2.5 小结与讨论 | 第52-53页 |
第3章 miR-100在卤虫两种发育模式中的表达特征 | 第53-60页 |
3.1 前言 | 第53页 |
3.2 材料 | 第53-54页 |
3.2.1 实验材料 | 第53-54页 |
3.2.2 主要试剂 | 第54页 |
3.2.3 主要仪器 | 第54页 |
3.3 方法 | 第54-57页 |
3.3.1 总RNA的提取 | 第54-55页 |
3.3.2 cDNA合成 | 第55-56页 |
3.3.3 定量PCR | 第56-57页 |
3.4 结果 | 第57-59页 |
3.5 小结与讨论 | 第59-60页 |
第4章 miR-100对卵生卤虫休眠卵形成过程中胚胎细胞的静息起抑制作用 | 第60-71页 |
4.1 引言 | 第60页 |
4.2 材料 | 第60-61页 |
4.2.1 实验材料 | 第60-61页 |
4.2.2 主要试剂 | 第61页 |
4.2.3 主要仪器 | 第61页 |
4.3 方法 | 第61-67页 |
4.3.1 卤虫的显微注射 | 第61-62页 |
4.3.2 Western Blotting | 第62-63页 |
4.3.3 定量PCR | 第63-64页 |
4.3.4 蜡切片的制备 | 第64页 |
4.3.5 Tunel凋亡检测 | 第64-65页 |
4.3.6 miRNA原位杂交 | 第65-67页 |
4.4 结果 | 第67-69页 |
4.5 小结与讨论 | 第69-71页 |
第5章 卤虫卵胎生发育过程中miR-100正向调控有丝分裂 | 第71-77页 |
5.1 引言 | 第71页 |
5.2 材料 | 第71-72页 |
5.2.1 实验材料 | 第71-72页 |
5.2.2 主要试剂 | 第72页 |
5.2.3 主要仪器 | 第72页 |
5.3 方法 | 第72-73页 |
5.3.1 BrdU检测 | 第72-73页 |
5.3.2 DAPI染核 | 第73页 |
5.4 结果 | 第73-76页 |
5.5 小结与讨论 | 第76-77页 |
第6章 miR-100通过以PLK1为靶点调控PLK1-MEK-ERK-RSK通路 | 第77-83页 |
6.1 引言 | 第77页 |
6.2 材料 | 第77-78页 |
6.2.1 实验材料 | 第77-78页 |
6.2.2 主要试剂 | 第78页 |
6.2.3 主要仪器 | 第78页 |
6.3 方法 | 第78-79页 |
6.3.1 miRNA靶基因预测方法 | 第78-79页 |
6.3.2 蛋白样品检测 | 第79页 |
6.4 结果 | 第79-81页 |
6.5 小结与讨论 | 第81-83页 |
第7章 结论与展望 | 第83-84页 |
7.1 结论 | 第83页 |
7.2 展望 | 第83-84页 |
参考文献 | 第84-88页 |
作者简历 | 第88-89页 |
致谢 | 第89页 |