| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-21页 |
| 1.1 海藻研究概述 | 第14-15页 |
| 1.2 海蒿子简介 | 第15页 |
| 1.3 褐藻多糖 | 第15-17页 |
| 1.3.1 褐藻胶 | 第16页 |
| 1.3.2 褐藻糖胶 | 第16页 |
| 1.3.3 褐藻淀粉 | 第16-17页 |
| 1.4 褐藻多糖的生物活性研究 | 第17-19页 |
| 1.4.1 降血糖活性 | 第17页 |
| 1.4.2 抗肿瘤活性 | 第17-18页 |
| 1.4.3 免疫调节 | 第18-19页 |
| 1.4.4 抗氧化活性 | 第19页 |
| 1.5 本论文的立题背景及主要研究内容 | 第19-21页 |
| 1.5.1 立题背景及研究意义 | 第19-20页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第20-21页 |
| 第二章 不同提取方法对海蒿子多糖性质的影响 | 第21-32页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第21页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第21页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-26页 |
| 2.2.1 海蒿子的前处理 | 第21-22页 |
| 2.2.2 海蒿子多糖的提取 | 第22-23页 |
| 2.2.2.1 传统水提法提取海蒿子多糖 | 第22页 |
| 2.2.2.2 柠檬酸法提取海蒿子多糖 | 第22-23页 |
| 2.2.2.3 超声法提取海蒿子多糖 | 第23页 |
| 2.2.2.4 超声波辅助水提提取法 | 第23页 |
| 2.2.2.5 超声波辅助柠檬酸提取法 | 第23页 |
| 2.2.3 海蒿子多糖含量的测定 | 第23页 |
| 2.2.4 海蒿子多糖得率的计算 | 第23页 |
| 2.2.5 海蒿子多糖硫酸基含量的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.6 海蒿子多糖分子量的测定 | 第24页 |
| 2.2.7 海蒿子多糖抗氧化活性的测定 | 第24-25页 |
| 2.2.7.1 DPPH自由基清除能力的测定 | 第24页 |
| 2.2.7.2 ABTS自由基清除能力测定 | 第24-25页 |
| 2.2.7.3 还原力的测定 | 第25页 |
| 2.2.7.4 氧自由基吸收能力（ORAC）测定 | 第25页 |
| 2.2.8 数据分析 | 第25-26页 |
| 2.3 试验结果 | 第26-31页 |
| 2.3.1 不同提取方法对海蒿子多糖得率的影响 | 第26页 |
| 2.3.2 不同提取方法对海蒿子多糖硫酸基含量的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.3 不同提取方法所得海蒿子多糖的分子量 | 第27-28页 |
| 2.3.4 不同提取方法所得海蒿子多糖的抗氧化活性 | 第28-31页 |
| 2.3.4.1 DPPH自由基清除能力 | 第28页 |
| 2.3.4.2 ABTS+清除能力 | 第28-29页 |
| 2.3.4.3 还原力 | 第29-30页 |
| 2.3.4.4 氧自由基吸收能力（ORAC） | 第30-31页 |
| 2.4 本章小结 | 第31-32页 |
| 第三章 海蒿子粗多糖生物活性研究 | 第32-51页 |
| 3.1 材料与设备 | 第32-33页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第32页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第32-33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-39页 |
| 3.2.1 海蒿子粗多糖的制备 | 第33页 |
| 3.2.2 海蒿子粗多糖对鹅红细胞溶血的影响 | 第33-34页 |
| 3.2.3 抗肿瘤作用 | 第34-35页 |
| 3.2.3.1 对HEPG2肿瘤细胞的抗增殖作用 | 第34-35页 |
| 3.2.3.2 海蒿子多糖对人宫颈鳞癌细胞SIHA增殖的抑制作用 | 第35页 |
| 3.2.4 免疫调节作用 | 第35-36页 |
| 3.2.4.1 海蒿子多糖对巨噬细胞产生NO的影响 | 第35页 |
| 3.2.4.2 海蒿子多糖对昆明小鼠脾脏细胞的增殖作用 | 第35-36页 |
| 3.2.5 降血糖作用 | 第36-38页 |
| 3.2.5.1 α-淀粉酶的抑制活性的测定 | 第36-37页 |
| 3.2.5.2 α-D-葡萄糖苷酶抑制活性测定 | 第37页 |
| 3.2.5.3 对蔗糖酶和麦芽糖酶抑制活性的测定 | 第37-38页 |
| 3.2.6 海蒿子多糖钙复合物的制备及抗氧化性研究 | 第38页 |
| 3.2.6.1 海蒿子多糖钙复合物的制备 | 第38页 |
| 3.2.6.2 海蒿子多糖钙复合物抗氧化性研究 | 第38页 |
| 3.2.6.3 海蒿子多糖钙复合物红外扫描分析 | 第38页 |
| 3.2.7 数据分析 | 第38-39页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第39-49页 |
| 3.3.1 海蒿子粗多糖对鹅红细胞溶血的影响 | 第39页 |
| 3.3.2 海蒿子粗多糖抗肿瘤作用 | 第39-41页 |
| 3.3.2.1 对HEPG2肿瘤细胞的抗增殖作用 | 第39-40页 |
| 3.3.2.2 对人宫颈鳞癌细胞SIHA增殖的抑制作用 | 第40-41页 |
| 3.3.3 海蒿子粗多糖免疫调节作用 | 第41-43页 |
| 3.3.3.1 对巨噬细胞产生NO的影响 | 第41页 |
| 3.3.3.2 对小鼠脾脏淋巴细胞的增殖作用 | 第41-43页 |
| 3.3.4 对糖尿病关键酶的抑制活性 | 第43-46页 |
| 3.3.5 海蒿子多糖钙复合物制备和活性初步研究 | 第46-49页 |
| 3.3.5.1 不同质量浓度比海蒿子多糖钙复合物的螯合率 | 第46页 |
| 3.3.5.2 海蒿子多糖钙复合物对ABTS+清除能力 | 第46-47页 |
| 3.3.5.3 海蒿子多糖钙复合物对DPPH自由基清除作用 | 第47-48页 |
| 3.3.5.4 海蒿子多糖钙复合物还原力测定 | 第48页 |
| 3.3.5.5 红外分析谱图 | 第48-49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-51页 |
| 第四章 海蒿子多糖分离纯化、生物活性和结构鉴定 | 第51-74页 |
| 4.1 材料与设备 | 第51页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第51页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第51页 |
| 4.2 实验方法 | 第51-54页 |
| 4.2.1 海蒿子多糖的分离纯化 | 第51-52页 |
| 4.2.2 纯化后组分多糖理化性质测定 | 第52-53页 |
| 4.2.2.1 总糖含量 | 第52页 |
| 4.2.2.2 紫外全波长波谱分析 | 第52页 |
| 4.2.2.3 蛋白质含量检测 | 第52-53页 |
| 4.2.2.4 硫酸基含量检测 | 第53页 |
| 4.2.3 对抗氧化活性测定 | 第53页 |
| 4.2.4 抗肿瘤活性测定 | 第53页 |
| 4.2.4.1 对对HEPG2肿瘤细胞的抗增殖作用 | 第53页 |
| 4.2.4.2 对人乳腺癌细胞株MDA-MB-231肿瘤细胞抗增殖作用 | 第53页 |
| 4.2.5 降血糖活性测定 | 第53页 |
| 4.2.5.1 α-淀粉酶的抑制活性的测定 | 第53页 |
| 4.2.5.2 α- D-葡萄糖苷酶抑制活性测定 | 第53页 |
| 4.2.5.3 对蔗糖酶和麦芽糖酶抑制活性的测定 | 第53页 |
| 4.2.6 结构鉴定 | 第53-54页 |
| 4.2.6.1 分子量测定 | 第53页 |
| 4.2.6.2 单糖组成分析 | 第53-54页 |
| 4.2.6.3 高碘酸氧化分析 | 第54页 |
| 4.2.6.4 红外分析 | 第54页 |
| 4.2.6.5 核磁分析 | 第54页 |
| 4.2.7 数据分析 | 第54页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第54-72页 |
| 4.3.1 海蒿子多糖的分离纯化 | 第54-55页 |
| 4.3.2 纯化后组分多糖理化性质 | 第55-59页 |
| 4.3.2.1 纯化后多糖的紫外波谱扫描 | 第55-57页 |
| 4.3.2.2 纯化后多糖的总糖含量、蛋白质含量和硫酸基含量 | 第57-59页 |
| 4.3.3 对抗氧化活性的测定 | 第59-60页 |
| 4.3.4 抗肿瘤活性测定 | 第60-62页 |
| 4.3.5 降血糖活性测定 | 第62-64页 |
| 4.3.6 结构分析 | 第64-72页 |
| 4.3.6.1 分子量测定 | 第64-66页 |
| 4.3.6.2 单糖组成和糖醛酸组成分析 | 第66-68页 |
| 4.3.6.3 高碘酸氧化 | 第68-70页 |
| 4.3.6.4 红外光谱 | 第70-71页 |
| 4.3.6.5 核磁光谱 | 第71-72页 |
| 4.4 本章小结 | 第72-74页 |
| 结论和展望 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-83页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 附件 | 第85页 |
