| 英汉缩略语名词对照 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 1 实验材料 | 第13-18页 |
| 1.1 菌株和质粒 | 第13-14页 |
| 1.2 引物 | 第14-16页 |
| 1.3 实验动物 | 第16页 |
| 1.4 实验试剂 | 第16-17页 |
| 1.5 主要仪器 | 第17-18页 |
| 2 实验方法 | 第18-27页 |
| 2.1 lytR基因缺陷菌株构建 | 第18-19页 |
| 2.2 异位回补表达pJWV25-spd_1741质粒构建 | 第19-21页 |
| 2.3 SPD_1741蛋白在E.coliBL21中表达纯化 | 第21页 |
| 2.4 生长曲线 | 第21-22页 |
| 2.5 细菌形态学变化 | 第22页 |
| 2.6 磷壁酸的改变 | 第22-23页 |
| 2.7 荚膜多糖的变化 | 第23-24页 |
| 2.8 流式细胞术(FACS)分析 | 第24页 |
| 2.9 小鼠毒力实验 | 第24-25页 |
| 2.10 定植实验 | 第25页 |
| 2.11 肺组织病理切片及染色 | 第25页 |
| 2.12 细胞粘附侵袭实验 | 第25-26页 |
| 2.13 细胞抗吞噬实验 | 第26页 |
| 2.14 电泳迁移率试验(EMSA) | 第26页 |
| 2.15 统计方法 | 第26-27页 |
| 3 实验结果 | 第27-41页 |
| 3.1 构建并验证ΔlytR缺陷菌 | 第27-28页 |
| 3.2 构建并验证ΔlytRmutant-complement回补菌 | 第28-29页 |
| 3.3 LytR重组蛋白的诱导表达及纯化 | 第29页 |
| 3.4 肺炎链球菌不同生长时期LytR蛋白表达情况分析 | 第29-30页 |
| 3.5 细菌表面的LytR蛋白分析 | 第30-31页 |
| 3.6 LytR蛋白对于细菌生长而言是至关重要 | 第31-32页 |
| 3.7 电子显微镜下的细菌的形态学变化 | 第32-33页 |
| 3.8 LytR参与了荚膜多糖的表面锚定过程 | 第33-34页 |
| 3.9 LytR参与了磷壁酸合成的过程 | 第34-35页 |
| 3.10 LytR蛋白影响细菌的粘附能力 | 第35-36页 |
| 3.11 LytR蛋白影响细菌的抗吞噬能力 | 第36-37页 |
| 3.12 缺陷lytR使细菌毒力减弱 | 第37-38页 |
| 3.13 缺陷lytR使细菌定植和侵袭力减弱 | 第38-40页 |
| 3.14 EMSA验证LytR蛋白与LytA/CPS/RafX启动子片段的未结合 | 第40-41页 |
| 4 讨论 | 第41-43页 |
| 全文总结 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 文献综述 LytR-CpsA-Psr蛋白家族的研究现状 | 第47-53页 |
| 参考文献 | 第50-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文题录 | 第54页 |
