| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 缩略词表 | 第8-9页 |
| 1 绪论 | 第9-17页 |
| 1.1 二十碳五烯酸和二十二碳六烯酸简介 | 第9-11页 |
| 1.1.1 EPA和DHA受关注的来源 | 第9页 |
| 1.1.2 Omega-3多不饱和脂肪酸的膳食来源及推荐摄入量 | 第9-10页 |
| 1.1.3 Omega-3多不饱和脂肪酸体内转化过程与代谢 | 第10-11页 |
| 1.2 Omega-3多不饱和脂肪酸的生物学功效 | 第11-13页 |
| 1.2.1 Omega-3多不饱和脂肪酸与前列腺肿瘤的研究相状 | 第11-12页 |
| 1.2.2 Omega-3多不饱和脂肪酸与其他癌症的研究现状 | 第12-13页 |
| 1.3 EPA和DHA功效及机理差异的研究现状 | 第13-14页 |
| 1.3.1 二者在心血管疾病中的差异研究现状 | 第13-14页 |
| 1.3.2 二者在炎症方面的差异研究现状 | 第14页 |
| 1.4 转录组学及其在疾病研究领域的应用 | 第14-15页 |
| 1.4.1 转录组学简介 | 第14页 |
| 1.4.2 转录组学在肿瘤研究领域的应用 | 第14-15页 |
| 1.5 立题依据及主要研究内容 | 第15-17页 |
| 1.5.1 立体依据及研究意义 | 第15页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第15-17页 |
| 2 材料和方法 | 第17-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.1.1 实验细胞 | 第17页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第17页 |
| 2.1.3 实验所需材料及供应商 | 第17页 |
| 2.1.4 实验用仪器及设备 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-24页 |
| 2.2.1 全人工合成饲料的制作 | 第18页 |
| 2.2.2 细胞移植瘤模型的构建 | 第18-19页 |
| 2.2.3 小鼠肿瘤和血清的获取 | 第19页 |
| 2.2.4 小鼠血清中人前列腺特异性抗原PSA测定方法 | 第19-20页 |
| 2.2.5 脂肪酸含量的测定 | 第20页 |
| 2.2.6 转录组高通量测序流程 | 第20-22页 |
| 2.2.7 转录组高通量测序数据的分析方法 | 第22-24页 |
| 2.3 数据处理及分析方法 | 第24-25页 |
| 3 结果与讨论 | 第25-50页 |
| 3.1 全人工合成饲料中脂肪酸种类和含量 | 第25-26页 |
| 3.2 膳食补充EPA或DHA对荷瘤小鼠的影响 | 第26-31页 |
| 3.2.1 膳食补充EPA或DHA对荷瘤小鼠瘤体变化的影响 | 第26-28页 |
| 3.2.2 膳食补充EPA或DHA对荷瘤小鼠血清中PSA浓度的影响 | 第28-29页 |
| 3.2.3 膳食补充EPA或DHA对荷瘤小鼠血清中脂肪酸种类和含量的影响 | 第29-30页 |
| 3.2.4 膳食补充EPA或DHA对荷瘤小鼠血脂的影响 | 第30-31页 |
| 3.3 转录组分析揭示EPA和DHA对前列腺肿瘤的基因调控存在差异 | 第31-33页 |
| 3.4 转录组数据揭示EPA抑制前列腺肿瘤的机理 | 第33-48页 |
| 3.4.1 EPA和N6组相比下调的差异表达基因功能分析 | 第33-44页 |
| 3.4.2 EPA和N6组相比上调的差异表达基因功能分析 | 第44-48页 |
| 3.5 转录组分析显示DHA并未引起与EPA相同的生物学过程 | 第48-50页 |
| 主要结论与展望 | 第50-51页 |
| 主要结论 | 第50页 |
| 展望 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-61页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第61页 |
