| 英汉缩略语名词对照 | 第12-13页 |
| 摘要 | 第13-15页 |
| ABSTRACT | 第15-17页 |
| 第一章 绪论 | 第18-34页 |
| 1 乳腺癌基因治疗概述 | 第18-22页 |
| 1.1 乳腺癌与基因治疗 | 第18页 |
| 1.2 乳腺癌基因疗法的分类 | 第18-21页 |
| 1.3 Survivin与乳腺癌基因治疗 | 第21-22页 |
| 2 PEI作为基因递送载体的概述 | 第22-26页 |
| 2.1 基因递送载体与PEI简介 | 第22页 |
| 2.2 烷基化修饰的PEI衍生物 | 第22-23页 |
| 2.3 生物可降解的PEI衍生物 | 第23-26页 |
| 3 本论文的课题设计及主要研究内容 | 第26-28页 |
| 3.1 本论文的课题设计 | 第26-27页 |
| 3.2 本论文的主要研究内容 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-34页 |
| 第二章 bPEI1800-C_(12)的合成、表征和基因递送效率 | 第34-70页 |
| 第一节 bPEI1800-C_(12)的合成、结构确认及理化性质研究 | 第34-40页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第34-35页 |
| 2 实验方法 | 第35-36页 |
| 2.1 bPEI1800-C_(12)的合成和结构确认 | 第35页 |
| 2.2 bPEI1800-C_(12)的缓冲性能 | 第35页 |
| 2.3 bPEI1800-C_(12)的细胞毒性研究 | 第35-36页 |
| 2.4 bPEI1800-C_(12)的红细胞溶血实验 | 第36页 |
| 3 结果与讨论 | 第36-40页 |
| 3.1 bPEI1800-C_(12)的合成和结构确认 | 第36-37页 |
| 3.2 bPEI1800-C_(12)的缓冲性能 | 第37-38页 |
| 3.3 bPEI1800-C_(12)的细胞毒性研究 | 第38-40页 |
| 3.4 bPEI1800-C_(12)的红细胞溶血实验 | 第40页 |
| 第二节 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的制备及表征 | 第40-48页 |
| 1 仪器和材料 | 第40-41页 |
| 2 实验方法 | 第41-42页 |
| 2.1 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的制备 | 第41页 |
| 2.2 凝胶阻滞实验考察bPEI1800-C_(12)固缩DNA的能力 | 第41页 |
| 2.3 圆二色谱法观察bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒中DNA的构象 | 第41页 |
| 2.4 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的粒径和zeta电位 | 第41-42页 |
| 2.5 透射电子显微镜观察bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的外观形态 | 第42页 |
| 2.6 肝素置换实验考察bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的稳定性 | 第42页 |
| 3 结果与讨论 | 第42-48页 |
| 3.1 bPEI1800-C_(12)固缩DNA的能力 | 第42-43页 |
| 3.2 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒中DNA的构象 | 第43-44页 |
| 3.3 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的粒径和zeta电位 | 第44-45页 |
| 3.4 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的外观形态 | 第45-47页 |
| 3.5 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的稳定性 | 第47-48页 |
| 第三节 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的细胞摄取及胞内转运研究 | 第48-55页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第48-49页 |
| 2 实验方法 | 第49-50页 |
| 2.1 FITC标记的bPEI1800-C_(12)的合成 | 第49页 |
| 2.2 共聚焦激光显微镜观察bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的细胞摄取 | 第49页 |
| 2.3 流式细胞术定量测定bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的细胞摄取 | 第49-50页 |
| 2.4 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的细胞摄取机制 | 第50页 |
| 2.5 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的胞内转运 | 第50页 |
| 3 结果与讨论 | 第50-55页 |
| 3.1 定性观察bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的细胞摄取 | 第50-51页 |
| 3.2 定量测定bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的细胞摄取 | 第51-52页 |
| 3.3 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的细胞摄取机制 | 第52-54页 |
| 3.4 bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的胞内转运 | 第54-55页 |
| 第四节 采用报告基因考察bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的体外转染 | 第55-63页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第55-56页 |
| 2 实验方法 | 第56-58页 |
| 2.1 luciferase及GFP报告基因质粒的制备 | 第56-57页 |
| 2.2 采用luceferase报告基因考察bPEI1800-C_(12)/DNA的体外转染效率 | 第57-58页 |
| 2.3 采用GFP报告基因考察bPEI1800-C_(12)/DNA的体外转染 | 第58页 |
| 3 结果与讨论 | 第58-63页 |
| 3.1 luciferase和GFP报告基因质粒的制备 | 第58-59页 |
| 3.2 采用luceferase报告基因考察bPEI1800-C_(12)/DNA的体外转染效率 | 第59-63页 |
| 3.3 采用GFP报告基因考察bPEI1800-C_(12)/DNA的体外转染 | 第63页 |
| 第五节 生物发光成像法考察bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的体内转染 | 第63-66页 |
| 1 仪器、材料与动物 | 第64页 |
| 2 实验方法 | 第64-65页 |
| 2.1 生物发光成像法观察bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的体内转染 | 第64-65页 |
| 3 结果与讨论 | 第65-66页 |
| 3.1 生物发光成像法观察bPEI1800-C_(12)/DNA复合颗粒的体内转染 | 第65-66页 |
| 本章小结 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-70页 |
| 第三章 bPEI1800-C_(12)-SS的合成、表征和基因递送效率 | 第70-84页 |
| 第一节 bPEI1800-C_(12)-SS的合成、结构确认及理化性质研究 | 第70-78页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第70-71页 |
| 2 实验方法 | 第71-72页 |
| 2.1 bPEI1800-SS和bPEI1800-C_(12)-SS的合成和结构确认 | 第71-72页 |
| 2.2 bPEI1800-C_(12)-SS的缓冲性能 | 第72页 |
| 2.3 bPEI1800-C_(12)-SS的细胞毒性研究 | 第72页 |
| 2.4 bPEI1800-C_(12)-SS的红细胞溶血实验 | 第72页 |
| 3 结果与讨论 | 第72-78页 |
| 3.1 bPEI1800-SS和bPEI1800-C_(12)-SS的合成和结构确认 | 第72-75页 |
| 3.2 bPEI1800-C_(12)-SS的缓冲性能 | 第75-76页 |
| 3.3 bPEI1800-C_(12)-SS的细胞毒性研究 | 第76-77页 |
| 3.4 bPEI1800-C_(12)-SS的红细胞溶血实验 | 第77-78页 |
| 第二节 bPEI1800-C_(12)-SS/DNA复合颗粒的制备及体外转染 | 第78-81页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第78-79页 |
| 2 实验方法 | 第79页 |
| 2.1 bPEI1800-C_(12)-SS/DNA复合颗粒的制备 | 第79页 |
| 2.2 凝胶阻滞实验考察bPEI1800-C_(12)-SS固缩DNA的能力 | 第79页 |
| 2.3 bPEI1800-C_(12)-SS/DNA复合颗粒体外转染乳腺癌细胞的研究 | 第79页 |
| 3 结果与讨论 | 第79-81页 |
| 3.1 bPEI1800-C_(12)-SS固缩DNA的能力 | 第79-80页 |
| 3.2 bPEI1800-C_(12)-SS/DNA复合颗粒体外转染乳腺癌细胞的效率 | 第80-81页 |
| 本章小结 | 第81-83页 |
| 参考文献 | 第83-84页 |
| 第四章 lPEI2200-C_(12)的合成、表征和基因递送效率 | 第84-98页 |
| 第一节 lPEI2200-C_(12)的合成、结构确认及理化性质研究 | 第84-91页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第84-85页 |
| 2 实验方法 | 第85-86页 |
| 2.1 lPEI2200的合成和结构确认 | 第85页 |
| 2.2 lPEI2200-C_(12)的合成和结构确认 | 第85页 |
| 2.3 lPEI2200-C_(12)的缓冲性能 | 第85-86页 |
| 2.4 lPEI2200-C_(12)的细胞毒性研究 | 第86页 |
| 2.5 lPEI2200-C_(12)的红细胞溶血实验 | 第86页 |
| 3 结果与讨论 | 第86-91页 |
| 3.1 lPEI2200的合成和结构确认 | 第86-87页 |
| 3.2 lPEI2200-C_(12)的合成和结构确认 | 第87-88页 |
| 3.3 lPEI2200-C_(12)的缓冲性能 | 第88-89页 |
| 3.4 lPEI2200-C_(12)的细胞毒性研究 | 第89-90页 |
| 3.5 lPEI2200-C_(12)的红细胞溶血实验 | 第90-91页 |
| 第二节 lPEI2200-C_(12)/DNA复合颗粒的制备及体外转染 | 第91-95页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第91-92页 |
| 2 实验方法 | 第92-93页 |
| 2.1 lPEI2200-C_(12)/DNA复合颗粒的制备 | 第92页 |
| 2.2 凝胶阻滞实验考察lPEI2200-C_(12)固缩DNA的能力 | 第92页 |
| 2.3 lPEI2200-C_(12)/DNA复合颗粒体外转染乳腺癌细胞的研究 | 第92-93页 |
| 3 结果与讨论 | 第93-95页 |
| 3.1 lPEI2200-C_(12)固缩DNA的能力 | 第93页 |
| 3.2 lPEI2200-C_(12)/DNA复合颗粒体外转染乳腺癌细胞的效率 | 第93-95页 |
| 本章小结 | 第95-97页 |
| 参考文献 | 第97-98页 |
| 第五章 lPEI2200-C_(12)-SS的合成、表征和基因递送效率 | 第98-112页 |
| 第一节 lPEI2200-C_(12)-SS的合成、结构确认及理化性质研究 | 第98-106页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第98-99页 |
| 2 实验方法 | 第99-100页 |
| 2.1 lPEI2200-SS和IPEI2200-C_(12)-SS的合成和结构确认 | 第99-100页 |
| 2.2 lPEI2200-C_(12)-SS的缓冲性能 | 第100页 |
| 2.3 lPEI2200-C_(12)-SS的细胞毒性研究 | 第100页 |
| 2.4 lPEI2200-C_(12)-SS的红细胞溶血实验 | 第100页 |
| 3 结果与讨论 | 第100-106页 |
| 3.1 lPEI2200-SS和lPEI2200-C_(12)-SS的合成和结构确认 | 第100-103页 |
| 3.2 lPEI2200-C_(12)-SS的缓冲性能 | 第103-104页 |
| 3.3 lPEI2200-C_(12)-SS的细胞毒性研究 | 第104-105页 |
| 3.4 lPEI2200-C_(12)-SS的红细胞溶血实验 | 第105-106页 |
| 第二节 lPEI2200-C_(12)-SS/DNA复合颗粒的制备及体外转染 | 第106-110页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第106-107页 |
| 2 实验方法 | 第107页 |
| 2.1 lPEI2200-C_(12)-SS/DNA复合颗粒的制备 | 第107页 |
| 2.2 凝胶阻滞实验考察lPEI2200-C_(12)-SS固缩DNA的能力 | 第107页 |
| 2.3 lPEI2200-C_(12)-SS/DNA复合颗粒体外转染乳腺癌细胞的研究 | 第107页 |
| 3 结果与讨论 | 第107-110页 |
| 3.1 lPEI2200-C_(12)-SS固缩DNA的能力 | 第107-108页 |
| 3.2 lPEI2200-C_(12)-SS/DNA复合颗粒体外转染乳腺癌细胞的效率 | 第108-110页 |
| 本章小结 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-112页 |
| 第六章 最佳质粒DNA递送载体的筛选、及其体内外基因递送效率 | 第112-126页 |
| 1 仪器、材料、细胞和动物 | 第112-113页 |
| 2 实验方法 | 第113-115页 |
| 2.1 MTT法考察初选5种PEI衍生物的细胞毒性 | 第113页 |
| 2.2 TEM观察修饰方法对PEI/DNA复合颗粒外观形态的影响 | 第113-114页 |
| 2.3 初选5种PEI衍生物递送报告基因质粒的体外转染 | 第114页 |
| 2.4 优选PEI衍生物递送luc基因质粒的体内转染 | 第114-115页 |
| 3 结果与讨论 | 第115-124页 |
| 3.1 初选5种PEI衍生物的细胞毒性 | 第115-117页 |
| 3.2 修饰方法对PEI/DNA复合颗粒外观形态的影响 | 第117-118页 |
| 3.3 初选5种PEI衍生物递送报告基因质粒的体外转染 | 第118-122页 |
| 3.4 优选PEI衍生物递送luc基因质粒的体内转染 | 第122-124页 |
| 本章小结 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-126页 |
| 第七章 siRNA递送载体的筛选、及其递送siRNA~(sur)的抗肿瘤研究 | 第126-152页 |
| 第一节 PEI/siRNA复合颗粒的制备及表征 | 第126-133页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第126-127页 |
| 2 实验方法 | 第127-128页 |
| 2.1 PEI/siRNA复合颗粒的制备 | 第127页 |
| 2.2 凝胶阻滞实验考察优选PEI衍生物固缩siRNA的能力 | 第127页 |
| 2.3 凝胶阻滞实验考察优选还原响应性PEI衍生物释放siRNA的能力 | 第127页 |
| 2.4 PEI衍生物/siRNA复合颗粒的粒径和zeta电位 | 第127-128页 |
| 2.5 透射电子显微镜观察优选PEI衍生物/siRNA复合颗粒的外观形态 | 第128页 |
| 2.6 流式细胞术考察优选PEI衍生物/siRNA复合颗粒的细胞摄取 | 第128页 |
| 3 结果与讨论 | 第128-133页 |
| 3.1 初选的5种PEI衍生物固缩siRNA的能力 | 第128-129页 |
| 3.2 还原响应性PEI衍生物释放siRNA的能力 | 第129-130页 |
| 3.3 PEI衍生物/siRNA复合颗粒的粒径和zeta电位 | 第130-131页 |
| 3.4 PEI衍生物/siRNA复合颗粒的外观形态 | 第131-132页 |
| 3.5 PEI衍生物/siRNA复合颗粒的细胞摄取 | 第132-133页 |
| 第二节 初选的5种PEI衍生物递送siRNA沉默luc靶基因的能力 | 第133-140页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第133-134页 |
| 2 实验方法 | 第134-135页 |
| 2.1 PEI/siRNA复合颗粒制备工艺和体外干扰条件的筛选 | 第134-135页 |
| 2.2 考察初选的5种PEI衍生物递送siRNA1~(luc)沉默luc靶基因的能力 | 第135页 |
| 3 结果与讨论 | 第135-140页 |
| 3.1 PEI/siRNA复合颗粒制备工艺和体外干扰条件的筛选 | 第135-138页 |
| 3.2 初选的5种PEI衍生物递送siRNA~(luc)沉默luc靶基因的能力 | 第138-140页 |
| 第三节 优选PEI衍生物递送siRN~(sur)的体外抗肿瘤研究 | 第140-144页 |
| 1 仪器、材料与细胞 | 第140页 |
| 2 实验方法 | 第140-141页 |
| 2.1 CCK-8法考察PEI衍生物递送siRNA~(sur)抑制肿瘤细胞增殖的能力 | 第140页 |
| 2.2 划痕实验考察PEI衍生物递送siRNA~(sur)抑制肿瘤细胞增殖的能力 | 第140-141页 |
| 2.3 考察PEI衍生物递送siRNA(sur)诱导肿瘤细胞凋亡的能力 | 第141页 |
| 3 结果与讨论 | 第141-144页 |
| 3.1 CCK-8法考察PEI衍生物递送siRNA~(sur)抑制肿瘤细胞增殖的能力 | 第141-142页 |
| 3.2 划痕实验考察PEI衍生物递送siRNA~(sur)抑制肿瘤细胞增殖的能力 | 第142-143页 |
| 3.3 PEI衍生物递送siRNA~(sur)诱导肿瘤细胞凋亡的能力 | 第143-144页 |
| 第四节 lPEI2200-SS递送靶向survivin的siRNA的体内抗肿瘤研究 | 第144-150页 |
| 1 仪器、材料与动物 | 第144页 |
| 2 实验方法 | 第144-145页 |
| 2.1 荷4T1乳腺癌小鼠肿瘤模型的建立及给药方法 | 第144-145页 |
| 3 结果与讨论 | 第145-150页 |
| 本章小结 | 第150-151页 |
| 参考文献 | 第151-152页 |
| 第八章 全文总结与展望 | 第152-157页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文及其它成果 | 第157-158页 |
| 致谢 | 第158-159页 |
