摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1 绪论 | 第9-19页 |
1.1 CFTR 概述 | 第9-17页 |
1.1.1 CFTR 基因及蛋白 | 第9-10页 |
1.1.2 CFTR 结构及功能 | 第10-12页 |
1.1.3 CFTR 的突变 | 第12-13页 |
1.1.4 CFTR 相关疾病 | 第13-15页 |
1.1.5 CFTR 的活性调节剂 | 第15-17页 |
1.1.6 CFTR 活性调节剂的发现与高通量筛选 | 第17页 |
1.2 白藜芦醇寡聚体 | 第17-18页 |
1.3 本研究的内容及目的 | 第18-19页 |
2 实验材料与方法 | 第19-26页 |
2.1 道德声明 | 第19页 |
2.2 实验材料 | 第19-20页 |
2.2.1 细胞系 | 第19页 |
2.2.2 动物 | 第19页 |
2.2.3 主要试剂 | 第19-20页 |
2.2.4 主要仪器 | 第20页 |
2.3 实验方法 | 第20-26页 |
2.3.1 中药组分库的建立 | 第20-21页 |
2.3.2 白藜芦醇二聚体(TV)和四聚体(RV)的制备及鉴定 | 第21-23页 |
2.3.3 细胞荧光测定实验 | 第23页 |
2.3.4 内侧向外式膜片钳实验 | 第23-24页 |
2.3.5 大鼠结肠粘膜短路电流测定实验 | 第24页 |
2.3.6 小鼠小肠液体分泌实验 | 第24-25页 |
2.3.7 小鼠口咽部粘膜下腺体液体分泌实验 | 第25页 |
2.3.8 小鼠口咽部粘膜下腺体分泌液内蛋白的研究实验 | 第25页 |
2.3.9 数据分析 | 第25-26页 |
3 结果与分析 | 第26-48页 |
3.1 中药组分库的建立 | 第26-27页 |
3.2 筛选具有 wt-CFTR 抑制活性的组分 | 第27-29页 |
3.3 活性引导的化合物分离策略从活性组分中分离并鉴定活性化合物 | 第29-34页 |
3.3.1 HPLC 分级分离 | 第29-30页 |
3.3.2 活性引导的化合物分离策略 | 第30-31页 |
3.3.3 活性化合物的鉴定 | 第31-34页 |
3.4 TV 和 RV 对 CFTR 的抑制作用 | 第34-41页 |
3.4.1 TV 和 RV 对 wt-CFTR 的抑制作用 | 第34-37页 |
3.4.2 TV 和 RV 对ΔF508-CFTR 的抑制作用 | 第37-39页 |
3.4.3 TV 和 RV 对 G551D-CFTR 的抑制作用 | 第39-41页 |
3.5 TV 和 RV 对大鼠结肠粘膜短路电流的抑制作用 | 第41-42页 |
3.6 TV 和 RV 对小鼠小肠液体分泌的抑制作用 | 第42-43页 |
3.7 TV 和 RV 对小鼠口咽部粘膜下腺体液体分泌的抑制作用 | 第43-45页 |
3.8 TV 和 RV 对小鼠口咽部粘膜下腺体分泌液内蛋白种类及含量的影响 | 第45-48页 |
3.8.1 分泌液内蛋白种类的变化 | 第45-46页 |
3.8.2 分泌液内总蛋白含量的研究 | 第46-48页 |
4 讨论 | 第48-51页 |
4.1 活性引导的化合物分离策略的可行性 | 第48-49页 |
4.2 白藜芦醇寡聚体新的生物活性 | 第49页 |
4.3 TV 的优越性 | 第49-50页 |
4.4 饮食中芪类发挥体内生物活性的基础 | 第50页 |
4.5 芪类对 CFTR 的调节作用 | 第50-51页 |
结论 | 第51-53页 |
参考文献 | 第53-63页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第63-64页 |
致谢 | 第64页 |