摘要 | 第8-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
第1章 绪论 | 第11-18页 |
1.1 盐碱地对植物的影响 | 第11-12页 |
1.2 大豆耐盐碱性的研究进展 | 第12-13页 |
1.3 Na~+/H~+逆向转运蛋白与植物耐盐性的关系 | 第13-14页 |
1.4 提高植物耐盐碱性的方法 | 第14-16页 |
1.4.1 抗逆性锻炼 | 第14-15页 |
1.4.2 改造盐碱地 | 第15页 |
1.4.3 培育耐盐碱品种 | 第15-16页 |
1.5 本实验技术路线 | 第16页 |
1.6 课题研究的目的与意义 | 第16-18页 |
第2章 转 TvNHX1 基因大豆 T_3代和 T_4代的检测 | 第18-24页 |
2.1 试验材料 | 第18页 |
2.1.1 植物材料 | 第18页 |
2.1.2 主要试剂 | 第18页 |
2.1.3 主要仪器 | 第18页 |
2.2 试验方法 | 第18-19页 |
2.2.1 材料处理 | 第18-19页 |
2.2.2 基因组 DNA 的提取 | 第19页 |
2.2.3 转基因大豆后代 PCR 检测 | 第19页 |
2.3 结果与分析 | 第19-22页 |
2.3.1 转基因植株 NaCl 胁迫及 PPT 抗性的筛选 | 第19-20页 |
2.3.2 转基因大豆 T_3代和 T_4代 PCR 检测结果 | 第20-22页 |
2.4 讨论 | 第22-23页 |
2.5 本章小结 | 第23-24页 |
第3章 转基因大豆 TvNHX1 及相关基因的表达 | 第24-34页 |
3.1 试验材料 | 第24-25页 |
3.1.1 植物材料 | 第24页 |
3.1.2 主要试剂和酶 | 第24页 |
3.1.3 引物 | 第24页 |
3.1.4 主要仪器设备 | 第24-25页 |
3.2 试验方法 | 第25-27页 |
3.2.1 材料处理 | 第25页 |
3.2.2 基因组 RNA 的制备 | 第25页 |
3.2.3 cDNA 第一条链的合成(反转录) | 第25-26页 |
3.2.4 cDNA 的 PCR 反应 | 第26-27页 |
3.2.5 数据统计分析 | 第27页 |
3.3 结果与分析 | 第27-32页 |
3.3.1 植物总 RNA 的提取及半定量 RT-PCR 反应条件的优化 | 第27-29页 |
3.3.2 盐碱胁迫下转基因大豆 TvNHX1 基因及 GmNHX1 基因的表达 | 第29-32页 |
3.4 讨论 | 第32-33页 |
3.4.1 外源基因 TvNHX1 与内源基因 GmNHX1 的关系 | 第32-33页 |
3.4.2 GmNHX1 基因对转基因植株耐盐碱性的影响 | 第33页 |
3.5 本章小结 | 第33-34页 |
第4章 转 TvNHX1 基因大豆生理指标的测定 | 第34-46页 |
4.1 试验材料 | 第34-35页 |
4.1.1 植物材料 | 第34页 |
4.1.2 主要试剂 | 第34页 |
4.1.3 主要仪器 | 第34-35页 |
4.2 试验方法 | 第35-37页 |
4.2.1 植物材料的获取 | 第35页 |
4.2.2 MDA 含量的测定 | 第35页 |
4.2.3 SOD 活性的测定 | 第35-36页 |
4.2.4 POD 活性的测定 | 第36页 |
4.2.5 CAT 活性的测定 | 第36页 |
4.2.6 离子浓度的测定 | 第36-37页 |
4.3 结果与分析 | 第37-43页 |
4.3.1 盐碱胁迫下转基因大豆 MDA 含量的变化 | 第37-38页 |
4.3.2 盐碱胁迫下转基因大豆 SOD 活性的变化 | 第38页 |
4.3.3 盐碱胁迫下转基因大豆 POD 活性的变化 | 第38-39页 |
4.3.4 盐碱胁迫下转基因大豆 CAT 活性的变化 | 第39-40页 |
4.3.5 盐碱胁迫下转基因大豆 Na~+、K~+、Ca~(2+)、Mg~(2+)浓度的变化 | 第40-43页 |
4.4 讨论 | 第43-45页 |
4.4.1 盐碱胁迫对植株体内酶活性的影响 | 第43-44页 |
4.4.2 盐碱胁迫对植物体内离子浓度的影响 | 第44-45页 |
4.5 本章小结 | 第45-46页 |
结论 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-54页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第54-56页 |
致谢 | 第56页 |