| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 第1章 文献综述 | 第9-19页 |
| 1.1 DHA简述 | 第9-12页 |
| 1.1.1 DHA的生理功能 | 第9-10页 |
| 1.1.2 DHA的市场应用 | 第10-11页 |
| 1.1.3 DHA来源 | 第11-12页 |
| 1.2 裂殖壶菌研究概况 | 第12-13页 |
| 1.2.1 裂殖壶菌简介 | 第12-13页 |
| 1.2.2 裂殖壶菌发酵生产DHA的研究近况 | 第13页 |
| 1.3 基于实验室的微生物定向驯化 | 第13-15页 |
| 1.3.1 微生物定向驯化的研究现状 | 第13-14页 |
| 1.3.2 稀禾定的应用概况 | 第14-15页 |
| 1.4 化学诱导剂的添加种类 | 第15-17页 |
| 1.4.1 生长素类 | 第15页 |
| 1.4.2 细胞信号转导因子 | 第15-16页 |
| 1.4.3 胺类 | 第16页 |
| 1.4.4 抗氧化剂类 | 第16-17页 |
| 1.5 转录组学简介 | 第17-18页 |
| 1.5.1 转录组学的研究技术 | 第17页 |
| 1.5.2 转录组学在微生物研究中的应用 | 第17-18页 |
| 1.6 本文的研究内容及意义 | 第18-19页 |
| 第2章 裂殖壶菌的稀禾定驯化 | 第19-35页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 实验对象及其来源 | 第19页 |
| 2.1.2 实验仪器设备 | 第19-20页 |
| 2.1.3 培养基及常用试剂 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-25页 |
| 2.2.1 裂殖壶菌的培养条件 | 第21-22页 |
| 2.2.2 裂殖壶菌的稀禾定驯化 | 第22-23页 |
| 2.2.3 稀禾定驯化株的耐受性验证 | 第23页 |
| 2.2.4 驯化株发酵性能差异比较 | 第23-25页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第25-33页 |
| 2.3.1 裂殖壶菌的稀禾定驯化曲线 | 第25-27页 |
| 2.3.2 驯化株稀禾定的耐受性验证实验 | 第27页 |
| 2.3.3 驯化株的摇瓶发酵性能比较 | 第27-31页 |
| 2.3.4 驯化株的补料分批发酵性能比较 | 第31-33页 |
| 2.4 本章小结 | 第33-35页 |
| 第3章 化学诱导剂对裂殖壶菌油脂积累的影响 | 第35-57页 |
| 3.1 实验材料 | 第35-37页 |
| 3.1.1 实验对象及其来源 | 第35页 |
| 3.1.2 实验仪器设备 | 第35-36页 |
| 3.1.3 培养基及常用试剂 | 第36-37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-38页 |
| 3.2.1 裂殖壶菌的培养条件 | 第37页 |
| 3.2.2 24 孔板中裂殖壶菌的化学胁迫处理 | 第37页 |
| 3.2.3 摇瓶中裂殖壶菌的化学胁迫处理 | 第37-38页 |
| 3.2.4 不同时间点添加诱导剂效果比较 | 第38页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第38-55页 |
| 3.2.1 24 孔板初筛化学诱导剂浓度 | 第40-43页 |
| 3.2.2 摇瓶复筛化学诱导剂浓度 | 第43-50页 |
| 3.2.3 不同时间点添加化学诱导剂效果比较 | 第50-55页 |
| 3.4 本章小结 | 第55-57页 |
| 第4章 转录组学技术分析化学诱导剂促进裂殖壶菌油脂积累的机制 | 第57-73页 |
| 4.1 实验材料 | 第57-58页 |
| 4.1.1 实验对象及其来源 | 第57页 |
| 4.1.2 实验仪器设备 | 第57-58页 |
| 4.1.3 培养基及常用试剂 | 第58页 |
| 4.2 实验方法 | 第58-64页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第64-70页 |
| 4.3.1 RNA提取样品的检测 | 第64-65页 |
| 4.3.2 Denovo组装 | 第65页 |
| 4.3.3 Unigene功能注释 | 第65-67页 |
| 4.3.4 差异表达基因检测 | 第67-68页 |
| 4.3.5 实时定量PCR结果分析 | 第68-69页 |
| 4.3.6 裂殖壶菌代谢途径分析比较 | 第69-70页 |
| 4.4 本章小结 | 第70-73页 |
| 第5章 结论与展望 | 第73-77页 |
| 5.1 工作结论 | 第73-75页 |
| 5.2 工作展望 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-87页 |
| 附录 | 第87-91页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第91-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |