英文缩略表 | 第6-8页 |
第一部分 利用CRISPR/Cas9技术构建LDLR/ApoE双基因缺陷猪模型 | 第8-47页 |
中文摘要 | 第8-10页 |
英文摘要 | 第10-12页 |
前言 | 第12-15页 |
1.实验材料 | 第15-17页 |
1.1 仪器设备 | 第15-16页 |
1.2 实验试剂和耗材 | 第16-17页 |
1.3 实验动物 | 第17页 |
2.实验方法 | 第17-28页 |
2.1 巴马猪原代成纤维细胞系(PFFs)建立 | 第17-19页 |
2.2 CRISPR/Cas9打靶质粒构建 | 第19-22页 |
2.3 构建LDLR/ApoE基因敲除细胞 | 第22-24页 |
2.4 体细胞克隆及胚胎移植 | 第24-25页 |
2.5 新生猪猪耳基因组提取及基因型鉴定 | 第25页 |
2.6 蛋白提取及Western-Blot | 第25-28页 |
3.实验结果 | 第28-40页 |
4.讨论 | 第40-42页 |
参考文献 | 第42-47页 |
第二部分 二十二碳六烯酸对神经胶质瘤转录组影响研究 | 第47-79页 |
中文摘要 | 第47-49页 |
英文摘要 | 第49-52页 |
前言 | 第52-54页 |
1.实验材料 | 第54-55页 |
1.1 仪器设备 | 第54页 |
1.2 试验试剂和耗材 | 第54-55页 |
1.3 细胞株 | 第55页 |
2.实验方法 | 第55-64页 |
2.1 细胞系复苏、培养、冻存、传代 | 第55-57页 |
2.2 细胞增殖率检测 | 第57页 |
2.3 细胞黏附率检测 | 第57-58页 |
2.4 细胞迁移率检测 | 第58-59页 |
2.5 细胞侵袭率检测 | 第59-60页 |
2.6 细胞凋亡率检测 | 第60页 |
2.7 细胞总RNA提取和实时定量PCR | 第60-62页 |
2.8 转录组测序 | 第62-64页 |
3.实验结果 | 第64-72页 |
4.讨论 | 第72-74页 |
参考文献 | 第74-79页 |
综述 | 第79-90页 |
参考文献 | 第85-90页 |
硕士期间发表论文情况 | 第90-91页 |
致谢 | 第91-92页 |