| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 缩略语 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 研究现状、成果 | 第11-12页 |
| 研究目的、方法 | 第12-13页 |
| 对象和方法 | 第13-23页 |
| ·样本来源 | 第13页 |
| ·实验仪器与设备 | 第13页 |
| ·试验用试剂 | 第13-16页 |
| ·细胞培养主要试剂 | 第13-14页 |
| ·PMPs提取及流式细胞仪检测试剂 | 第14页 |
| ·RT-PCR主要试剂 | 第14-16页 |
| ·PMPs制备方法及FACSCalibur流式细胞仪相关参数测定 | 第16-17页 |
| ·PMPs制备方法 | 第16-17页 |
| ·标准微球的用量 | 第17页 |
| ·流式细胞仪相关参数设定 | 第17页 |
| ·不同浓度PMPs干预内皮细胞CRL-1730的相关步骤 | 第17-19页 |
| ·内皮细胞的培养 | 第17-18页 |
| ·PMPs的提取 | 第18-19页 |
| ·不同浓度PMPs干预内皮细胞 | 第19页 |
| ·PMPs作用内皮细胞CRL-1730不同时间的相关步骤 | 第19页 |
| ·内皮细胞CRL-1730对照组 | 第19页 |
| ·RT-PCR检测 | 第19-23页 |
| ·统计学处理 | 第23页 |
| 结果 | 第23-41页 |
| ·不同种类不同浓度血小板激活剂诱导血小板释放PMPs比较 | 第23-24页 |
| ·体外培养人脐静脉内皮细胞情况 | 第24-25页 |
| ·血小板释放PMPs结果 | 第25页 |
| ·不同浓度PMPs刺激后,RT-PCR测定人脐静脉内皮细胞中VEGF121、ERK、PI3K以及KDR的表达情况 | 第25-33页 |
| ·不同干预浓度PMPs对CRL-1730 VEGF_(121)mRNA表达的影响 | 第25-27页 |
| ·不同干预浓度PMPs对CRL-1730 ERKmRNA表达的影响 | 第27-29页 |
| ·不同干预浓度PMPs对CRL-1730 PI3KmRNA表达的影响 | 第29-31页 |
| ·不同干预浓度PMPs对CRL-1730 KDRmRNA表达的影响 | 第31-33页 |
| ·PMPs作用于内皮细胞不同时间,RT-PCR测定人脐静脉内皮细胞中VEGF_(121)、ERK、PI3K以及KDR的表达情况 | 第33-41页 |
| ·PMPs不同作用时间对CRL-1730 VEGF_(121)mRNA表达的影响 | 第33-35页 |
| ·PMPs不同作用时间对CRL-1730ERKmRNA表达的影响 | 第35-37页 |
| ·PMPs不同作用时间对CRL-1730 PI3KmRNA表达的影响 | 第37-39页 |
| ·PMPs不同作用时间对CRL-1730 KDRmRNA表达的影响 | 第39-41页 |
| 讨论 | 第41-56页 |
| ·血小板微源颗粒的理化特性 | 第41-42页 |
| ·血小板微颗粒与某些疾病的关系 | 第42-44页 |
| ·PMPs与糖尿病的关系 | 第42页 |
| ·PMPs与类风湿性关节炎(RA) | 第42-43页 |
| ·PMPs与尿毒症 | 第43页 |
| ·PMPs与恶性肿瘤 | 第43-44页 |
| ·血小板微颗粒促进新生血管的形成的作用机制 | 第44-52页 |
| ·PMP释放VEGF | 第44-45页 |
| ·VEGF的作用及其下游信号转导通路 | 第45-52页 |
| ·本实验中结果的讨论 | 第52-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 发表论文说明 | 第61-62页 |
| 附图 | 第62-63页 |
| 综述 | 第63-74页 |
| 血小板来源微粒的生物学功能及其与细胞的相互作用 | 第63-70页 |
| 综述参考文献 | 第70-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
