| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 前言 | 第9-10页 |
| 第一章 SD 大鼠 ADSCs 的原代和传代培养 | 第10-16页 |
| 1 材料 | 第10-11页 |
| 1.1 实验动物 | 第10页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第10页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第10-11页 |
| 2 方法 | 第11-13页 |
| 2.1 主要试剂的配制方法 | 第11页 |
| 2.2 SD 大鼠 ADSCs 原代培养 | 第11-12页 |
| 2.3 脂肪干细胞传代培养 | 第12页 |
| 2.4 细胞冻存 | 第12-13页 |
| 2.5 细胞复苏 | 第13页 |
| 2.6 第 3 代大鼠脂肪干细胞生长曲线测定 | 第13页 |
| 2.7 MTT 法步骤 | 第13页 |
| 3 结果 | 第13-15页 |
| 3.1 ADSCs 原代培养 | 第13-15页 |
| 3.2 第3 代 ADSCs 生长曲线 | 第15页 |
| 4 结论 | 第15-16页 |
| 第二章 脂肪干细胞鉴定 | 第16-22页 |
| 1. 材料 | 第16页 |
| 2. 方法 | 第16-20页 |
| 2.1 成脂诱导培养基 | 第16-17页 |
| 2.2 成骨诱导培养基 | 第17-18页 |
| 2.3 成神经诱导培养基 | 第18页 |
| 2.4 Oil red O 染色液 | 第18页 |
| 2.5 5%AgNO3溶液的配制 | 第18页 |
| 2.6 脂肪干细胞鉴定[16] | 第18-20页 |
| 3. 结果 | 第20页 |
| 4. 结论 | 第20-22页 |
| 第三章 同种异体 PRP 提取液对 ADSCs 体外生长状况的影响 | 第22-27页 |
| 1 材料 | 第22页 |
| 2 方法 | 第22-24页 |
| 2.1 同种异体 PRP 提取液制备 | 第22-23页 |
| 2.2 以不同浓度的 PRP 提取液干预 ADSCs 体外生长 | 第23页 |
| 2.3 绘制 A、B、C、D 4 组生长曲线 | 第23-24页 |
| 2.4 MTT 法检测步骤 | 第24页 |
| 2.5 统计学方法 | 第24页 |
| 3. 结果 | 第24-26页 |
| 3.1 血小板计数 | 第24页 |
| 3.2 不同浓度同种异体 PRP 提取液对 ADSCs 体外生长状况的影响 | 第24-25页 |
| 3.3 A、B、C、D 4 组细胞生长曲线 | 第25-26页 |
| 4 结论 | 第26-27页 |
| 讨论 | 第27-30页 |
| 结论 | 第30-31页 |
| 进一步工作的方向 | 第31-32页 |
| 致谢 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-36页 |
| 攻读硕士期间研究成果 | 第36-37页 |
| 综述 | 第37-42页 |
| 参考文献 | 第41-42页 |
