| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略词对照表 | 第9-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-29页 |
| 1 壳寡糖的性质、功能及应用 | 第14-22页 |
| 1.1 壳寡糖的理化性质 | 第14页 |
| 1.2 壳寡糖的生理功能 | 第14-21页 |
| 1.2.1 生物活性 | 第14-15页 |
| 1.2.2 抗肿瘤作用 | 第15-17页 |
| 1.2.3 抗氧化保肝降血脂活性 | 第17-18页 |
| 1.2.4 促进肠道健康 | 第18页 |
| 1.2.5 抗菌 | 第18-19页 |
| 1.2.6 抗糖尿病 | 第19-21页 |
| 1.3 壳寡糖的应用 | 第21-22页 |
| 1.3.1 生物医药领域 | 第21页 |
| 1.3.2 饲料添加剂领域 | 第21页 |
| 1.3.3 保健食品领域 | 第21页 |
| 1.3.4 绿色农药 | 第21-22页 |
| 2 壳寡糖对机体的免疫调节作用 | 第22-25页 |
| 2.1 免疫系统的概念 | 第22-23页 |
| 2.1.1 免疫系统的组成及各部分的概况 | 第22页 |
| 2.1.2 免疫系统的主要作用 | 第22-23页 |
| 2.2 壳寡糖对机体整体的免疫调节作用 | 第23-24页 |
| 2.3 壳寡糖对巨噬细胞的免疫调节作用 | 第24-25页 |
| 3 TLR4 受体概述 | 第25-29页 |
| 3.1 TOLL 样受体概况 | 第25-26页 |
| 3.2 TLR4 在巨噬细胞的表达和功能 | 第26-27页 |
| 3.3 TLR4的受体研究进展 | 第27-29页 |
| 第二章 酶解法制备壳寡糖及其对机体免疫功能的调节作用 | 第29-45页 |
| 1 相关背景 | 第29-30页 |
| 1.1 研究现状及意义 | 第29页 |
| 1.2 MTT 法测定巨噬细胞的增殖 | 第29-30页 |
| 2 材料 | 第30-33页 |
| 2.1 试剂及材料 | 第30-31页 |
| 2.2 仪器设备 | 第31页 |
| 2.3 溶液配制 | 第31-33页 |
| 3 方法 | 第33-36页 |
| 3.1 壳寡糖的酶解制备及产物分析 | 第33页 |
| 3.1.1 酶解 | 第33页 |
| 3.1.2 产物分析 | 第33页 |
| 3.2 壳寡糖对小鼠 PMΦ功能的影响 | 第33-35页 |
| 3.2.1 小鼠腹腔巨噬细胞的制备 | 第33-34页 |
| 3.2.2 小鼠 PMΦ增殖能力的测定 | 第34页 |
| 3.2.3 小鼠 PMΦ吞噬中性红能力的测定 | 第34-35页 |
| 3.2.4 小鼠 PMΦ分泌 TNF-α因子能力的测定 | 第35页 |
| 3.3 壳寡糖对小鼠体内免疫功能的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.1 动物分组及给药 | 第35页 |
| 3.3.2 小鼠血清中免疫球蛋白含量的测定 | 第35-36页 |
| 3.3.3 小鼠免疫器官指数的测定 | 第36页 |
| 3.4 统计处理 | 第36页 |
| 4 结果 | 第36-43页 |
| 4.1 壳寡糖酶解产物分析结果 | 第36-37页 |
| 4.2 壳寡糖对小鼠 PMΦ功能的影响 | 第37-41页 |
| 4.2.1 小鼠 PMΦ增殖的检测结果 | 第37-39页 |
| 4.2.2 小鼠 PMΦ吞噬中性红能力的测定结果 | 第39-40页 |
| 4.2.3 小鼠 PMΦ分泌 TNF-α因子能力的测定结果 | 第40-41页 |
| 4.3 壳寡糖对小鼠体内免疫功能的影响 | 第41-43页 |
| 4.3.1 壳寡糖对小鼠血清 IgG、IgM 含量的影响 | 第41-42页 |
| 4.3.2 壳寡糖对小鼠脾脏、胸腺指数的影响 | 第42-43页 |
| 5 结论与讨论 | 第43-45页 |
| 第三章 壳寡糖对巨噬细胞表面 TLR4 受体表达的影响 | 第45-65页 |
| 1 相关背景 | 第45-46页 |
| 2 材料 | 第46-47页 |
| 2.1 试剂及材料 | 第46页 |
| 2.2 仪器设备 | 第46-47页 |
| 2.3 溶液配制 | 第47页 |
| 3 方法 | 第47-54页 |
| 3.1 荧光标记壳寡糖的制备及其与巨噬细胞的相互作用 | 第47-49页 |
| 3.1.1 FITC 标准曲线的制备 | 第47-48页 |
| 3.1.2 壳寡糖的 FITC 标记 | 第48页 |
| 3.1.3 FITC-COS 与巨噬细胞的相互作用研究 | 第48-49页 |
| 3.1.4 TLR4 沉默对 FITC-COS 与 RAW264.7 细胞相互作用的影响 | 第49页 |
| 3.2 壳寡糖对 RAW264.7 细胞的激活 | 第49-51页 |
| 3.2.1 RAW264.7 细胞的培养及传代 | 第49页 |
| 3.2.2 RAW264.7 细胞增殖能力的测定 | 第49-50页 |
| 3.2.3 RAW264.7 细胞吞噬中性红能力的测定 | 第50页 |
| 3.2.4 COS 对 RAW264.7 细胞分泌 NO 能力的影响 | 第50-51页 |
| 3.2.5 TLR4 沉默对 RAW264.7 细胞分泌 NO 能力的影响 | 第51页 |
| 3.3 COS 对巨噬细胞基因转录的影响 | 第51-54页 |
| 3.3.1 提取 COS 作用后 RAW264.7 巨噬细胞的总 RNA | 第51-52页 |
| 3.3.2 壳寡糖对 RAW264.7 细胞 TLR4 mRNA 水平的影响 | 第52-54页 |
| 4 结果 | 第54-63页 |
| 4.1 FITC 荧光标记壳寡糖的结果 | 第54-57页 |
| 4.1.1 FITC 标准曲线 | 第54-55页 |
| 4.1.2 壳寡糖的标记率 | 第55页 |
| 4.1.3 RAW264.7 细胞对 COS 的吞噬作用结果 | 第55-56页 |
| 4.1.4 TLR4 沉默对 RAW264.7 细胞吞噬壳寡糖的影响 | 第56-57页 |
| 4.2 COS 对 RAW264.7 的激活作用 | 第57-61页 |
| 4.2.1 壳寡糖对 RAW264.7 细胞增殖能力的影响 | 第57-59页 |
| 4.2.2 壳寡糖对 RAW264.7 细胞吞噬中性红能力的影响 | 第59-60页 |
| 4.2.3 壳寡糖对 RAW264.7 细胞分泌 NO 能力的影响 | 第60-61页 |
| 4.2.4 TLR4 沉默对 RAW264.7 细胞分泌 NO 能力的影响 | 第61页 |
| 4.3 壳寡糖对 RAW264.7 巨噬细胞基因转录的影响 | 第61-63页 |
| 4.3.1 提取总 RNA 的电泳结果 | 第61-62页 |
| 4.3.2 TLR4 沉默以及壳寡糖对 RAW264.7 细胞 TLR4、iNOS 及 TNF-α mRNA水平表达的影响 | 第62-63页 |
| 5 结论与讨论 | 第63-65页 |
| 结论与展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第74-75页 |
