| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-21页 |
| 1.1 葡萄风信子及其组织培养研究 | 第12-14页 |
| 1.1.1 葡萄风信子概述 | 第12页 |
| 1.1.2 葡萄风信子器官发生与植株再生 | 第12-13页 |
| 1.1.3 葡萄风信子体细胞胚发生研究进展 | 第13页 |
| 1.1.4 葡萄风信子基因转化受体系统的建立 | 第13-14页 |
| 1.2 单子叶植物遗传转化 | 第14-19页 |
| 1.2.1 单子叶植物遗传转化方法及其研究进展 | 第14-16页 |
| 1.2.2. 农杆菌介导的单子叶植物遗传转化的影响因素及提高转化率的方法 | 第16-19页 |
| 1.3 农杆菌介导的葡萄风信子遗传转化的现状 | 第19页 |
| 1.4 目的和意义 | 第19-20页 |
| 1.5 研究内容和技术路线 | 第20-21页 |
| 第二章 葡萄风信子愈伤组织遗传转化受体系统建立 | 第21-33页 |
| 2.1 材料和方法 | 第21页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第21页 |
| 2.2 试验方法 | 第21-23页 |
| 2.2.1 葡萄风信子遗传转化植株再生体系建立 | 第21-22页 |
| 2.2.2 葡萄风信子愈伤组织对不同抗生素的敏感性试验 | 第22-23页 |
| 2.3 结果与分析 | 第23-31页 |
| 2.3.1 葡萄风信子遗传转化植株再生体系建立 | 第23-27页 |
| 2.3.2 葡萄风信子愈伤组织对不同抗生素的敏感性试验 | 第27-31页 |
| 2.4 讨论 | 第31-32页 |
| 2.5 小结 | 第32-33页 |
| 第三章 葡萄风信子愈伤组织转化条件优化的研究 | 第33-40页 |
| 3.1 材料和方法 | 第33页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第33页 |
| 3.1.2 菌株和载体 | 第33页 |
| 3.2 试剂和仪器 | 第33页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第33页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第33页 |
| 3.3 方法 | 第33-34页 |
| 3.3.1 农杆菌菌液制备 | 第33-34页 |
| 3.3.2 转化及侵染 | 第34页 |
| 3.3.3 葡萄风信子转化愈伤组织的GUS组织化学检测 | 第34页 |
| 3.4 影响葡萄风信子遗传转化效率的因素 | 第34-35页 |
| 3.4.1 菌液浓度对遗传转化效率的影响 | 第34页 |
| 3.4.2 共培养时间对遗传转化效率的影响 | 第34页 |
| 3.4.3 侵染时间对遗传转化效率的影响 | 第34页 |
| 3.4.4 超声波预处理时间对遗传转化效率的影响 | 第34-35页 |
| 3.5 数据统计分析方法 | 第35页 |
| 3.6 结果与分析 | 第35-38页 |
| 3.6.1 农杆菌菌液浓度遗传转化效率的影响 | 第35-36页 |
| 3.6.2 共培养时间对遗传转化效率的影响 | 第36页 |
| 3.6.3 侵染时间对遗传转化效率的影响 | 第36-37页 |
| 3.6.4 超声波预处理时间对遗传转化效率的影响 | 第37-38页 |
| 3.7. 讨论 | 第38页 |
| 3.8 小结 | 第38-40页 |
| 第四章 农杆菌介导的葡萄风信子愈伤组织的转化 | 第40-45页 |
| 4.1 材料和方法 | 第40页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第40页 |
| 4.1.2 菌株和载体 | 第40页 |
| 4.2 试剂和仪器 | 第40页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第40页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第40页 |
| 4.3 方法 | 第40-41页 |
| 4.3.1 农杆菌菌液制备 | 第40页 |
| 4.3.2 转化及侵染 | 第40页 |
| 4.3.3 脱菌和筛选培养 | 第40-41页 |
| 4.4 转基因植株PCR检测 | 第41-42页 |
| 4.4.1 GUS组织化学分析 | 第41页 |
| 4.4.2 葡萄风信子基因组DNA的提取(CTAB法) | 第41页 |
| 4.4.3 转基因植株PCR检测 | 第41-42页 |
| 4.5 结果与分析 | 第42-43页 |
| 4.5.1 GUS组织化学染色 | 第42-43页 |
| 4.5.2 转基因植株PCR检测 | 第43页 |
| 4.6 讨论 | 第43-44页 |
| 4.7 小结 | 第44-45页 |
| 第五章 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 缩略词 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 作者简介 | 第53页 |
