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TRAF2在缺血性脑损伤中的作用及机制

中文摘要第4-6页
Abstract第6-8页
引言第11-14页
材料与方法第14-29页
    1 实验材料第14-20页
        1.1 实验试剂第14-15页
        1.2 实验动物第15页
        1.3 实验细胞第15页
        1.4 主要设备第15-16页
        1.5 主要试剂配制第16-20页
    2 实验方法第20-29页
        2.1 实验设计第20页
        2.2 实验分组第20页
        2.3 大脑中动脉阻塞(MCAO)脑缺血模型第20-21页
        2.4 侧脑室注射SIRNA第21页
        2.5 大脑梗死体积的测定第21-22页
        2.6 原代小胶质细胞培养第22-23页
        2.7 原代神经元的培养第23页
        2.8 神经元缺氧缺糖(OXYGEN-GLUCOSE DEPRIVATION,OGD)模型第23-24页
        2.9 免疫组织化学第24-25页
        2.10 WESTERN-BLOT第25-26页
        2.11 实时荧光定量PCR(QUANTITATIVE REAL-TIME PCR)第26-28页
        2.12 数据统计与分析第28-29页
实验结果第29-40页
    1 缺血再灌注后TRAF2在皮层和纹状体的缺血半暗带区域表达升高第29-30页
    2 MCAO后TRAF2在小鼠脑组织中的小胶质细胞和神经元均表达升高第30-31页
    3 TRAF2 SIRNA可降低脑梗死体积第31-33页
    4 TRAF2 SIRNA可减轻MCAO后脑内炎症反应第33-34页
    5 慢病毒敲减TRAF2对缺氧缺糖条件下小胶质细胞炎症因子表达无影响第34-36页
    6 经OGD NEURON CM处理后的原代小胶质细胞在ZVAD作用下发生死亡..26第36-37页
    7 OGD NEURON CM处理的原代小胶质细胞在ZVAD存在条件下发生NECROPTOSIS第37-38页
    8 慢病毒敲减TRAF2后由OGD NEURON CM和ZVAD引发的原代小胶质细胞NECROPTOSIS程度明显加重第38-40页
讨论第40-43页
结论第43-44页
参考文献第44-48页
综述第48-63页
    参考文献第54-63页
英文缩略词表第63-64页
致谢第64-65页

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