中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
引言 | 第11-14页 |
材料与方法 | 第14-29页 |
1 实验材料 | 第14-20页 |
1.1 实验试剂 | 第14-15页 |
1.2 实验动物 | 第15页 |
1.3 实验细胞 | 第15页 |
1.4 主要设备 | 第15-16页 |
1.5 主要试剂配制 | 第16-20页 |
2 实验方法 | 第20-29页 |
2.1 实验设计 | 第20页 |
2.2 实验分组 | 第20页 |
2.3 大脑中动脉阻塞(MCAO)脑缺血模型 | 第20-21页 |
2.4 侧脑室注射SIRNA | 第21页 |
2.5 大脑梗死体积的测定 | 第21-22页 |
2.6 原代小胶质细胞培养 | 第22-23页 |
2.7 原代神经元的培养 | 第23页 |
2.8 神经元缺氧缺糖(OXYGEN-GLUCOSE DEPRIVATION,OGD)模型 | 第23-24页 |
2.9 免疫组织化学 | 第24-25页 |
2.10 WESTERN-BLOT | 第25-26页 |
2.11 实时荧光定量PCR(QUANTITATIVE REAL-TIME PCR) | 第26-28页 |
2.12 数据统计与分析 | 第28-29页 |
实验结果 | 第29-40页 |
1 缺血再灌注后TRAF2在皮层和纹状体的缺血半暗带区域表达升高 | 第29-30页 |
2 MCAO后TRAF2在小鼠脑组织中的小胶质细胞和神经元均表达升高 | 第30-31页 |
3 TRAF2 SIRNA可降低脑梗死体积 | 第31-33页 |
4 TRAF2 SIRNA可减轻MCAO后脑内炎症反应 | 第33-34页 |
5 慢病毒敲减TRAF2对缺氧缺糖条件下小胶质细胞炎症因子表达无影响 | 第34-36页 |
6 经OGD NEURON CM处理后的原代小胶质细胞在ZVAD作用下发生死亡..26 | 第36-37页 |
7 OGD NEURON CM处理的原代小胶质细胞在ZVAD存在条件下发生NECROPTOSIS | 第37-38页 |
8 慢病毒敲减TRAF2后由OGD NEURON CM和ZVAD引发的原代小胶质细胞NECROPTOSIS程度明显加重 | 第38-40页 |
讨论 | 第40-43页 |
结论 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-48页 |
综述 | 第48-63页 |
参考文献 | 第54-63页 |
英文缩略词表 | 第63-64页 |
致谢 | 第64-65页 |