| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第一章 前言 | 第14-28页 |
| 1.1 褐菖鮋生物学特征及研究概况 | 第14-15页 |
| 1.1.1 形态学特征及习性 | 第14页 |
| 1.1.2 生长及繁殖 | 第14页 |
| 1.1.3 研究进展 | 第14-15页 |
| 1.2 多环芳烃研究进展 | 第15-21页 |
| 1.2.1 概况 | 第15-19页 |
| 1.2.2 危害 | 第19-21页 |
| 1.2.3 对水生生物的毒性研究 | 第21页 |
| 1.3 细胞色素P450的研究进展 | 第21-25页 |
| 1.3.1 基本概况 | 第21-23页 |
| 1.3.2 催化作用 | 第23页 |
| 1.3.3 诱导和抑制机制 | 第23-25页 |
| 1.3.4 污染物对鱼类CYP1A1基因、蛋白表达及酶活性的诱导研究 | 第25页 |
| 1.4 抗氧化防御系统 | 第25-27页 |
| 1.4.1 超氧化物歧化酶(SuperoxideDismutase,SOD) | 第26页 |
| 1.4.2 丙二醛(malondialdehyde,MDA) | 第26页 |
| 1.4.3 谷胱甘肽过氧化物酶(Glutathionesuperoxidase,GSH-Px) | 第26页 |
| 1.4.4 还原型谷胱甘肽(reducedglutathione,GSH) | 第26页 |
| 1.4.5 谷胱甘肽硫转移酶(glutathione-S-transferase,GST) | 第26-27页 |
| 1.5 研究的主要目的和意义 | 第27-28页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第28-33页 |
| 2.1 实验动物 | 第28页 |
| 2.2 主要试剂 | 第28-29页 |
| 2.3 主要仪器 | 第29-30页 |
| 2.4 毒性实验 | 第30-32页 |
| 2.4.1 浓度梯度设置 | 第30-31页 |
| 2.4.2 时间梯度设置 | 第31页 |
| 2.4.3 样品处理 | 第31-32页 |
| 2.5 主要溶液的配制 | 第32页 |
| 2.6 实验中用到的软件及数据处理 | 第32-33页 |
| 第三章 苯并芘对褐菖鮋的毒性效应 | 第33-63页 |
| 3.1 RT-PCR半定量检测褐菖鮋CYP1A1mRNA的变化 | 第33-40页 |
| 3.1.1 试剂和仪器(见第二章) | 第33页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第33-37页 |
| 3.1.3 实验结果 | 第37-40页 |
| 3.1.4 讨论 | 第40页 |
| 3.2 蛋白印迹杂交技术检测BaP对褐菖鮋CYP1A1基因的诱导表达 | 第40-47页 |
| 3.2.1 试剂和仪器(见第二章) | 第40页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第40-44页 |
| 3.2.3 实验结果 | 第44-46页 |
| 3.2.4 讨论 | 第46-47页 |
| 3.3 BaP对褐菖鮋肝脏EROD活性的诱导变化 | 第47-51页 |
| 3.3.1 试剂和仪器(见第二章) | 第47页 |
| 3.3.2 实验方法 | 第47-49页 |
| 3.3.3 实验结果 | 第49-51页 |
| 3.3.4 讨论 | 第51页 |
| 3.4 BaP对褐菖鮋肝脏抗氧化防御系统酶活性的毒性效应 | 第51-63页 |
| 3.4.1 BaP对褐菖鮋肝脏SOD活性的影响 | 第51-53页 |
| 3.4.2 BaP对褐菖鮋肝脏MDA活性的影响 | 第53-55页 |
| 3.4.3 BaP对褐菖鮋肝脏GPX活性的影响 | 第55-57页 |
| 3.4.4 BaP对褐菖鮋肝脏GSH活性的影响 | 第57-60页 |
| 3.4.5 BaP对褐菖鮋肝脏GST活性的影响 | 第60-63页 |
| 第四章 结论与展望 | 第63-66页 |
| 4.1 本研究的主要结论 | 第63-64页 |
| 4.2 展望 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第71-72页 |
| 缩略语录 | 第72页 |
