| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第13-26页 |
| 1 枣的研究概况 | 第13-16页 |
| 1.1 枣的概述 | 第13页 |
| 1.2 枣的主要功能成分 | 第13-16页 |
| 1.3 枣的开发与利用 | 第16页 |
| 2 多糖的研究进展 | 第16-24页 |
| 2.1 多糖的提取 | 第17-18页 |
| 2.2 多糖的分离纯化 | 第18-19页 |
| 2.3 多糖的化学结构与修饰 | 第19-21页 |
| 2.4 多糖的活性 | 第21-24页 |
| 2.4.1 活性多糖调节免疫功能功能 | 第21页 |
| 2.4.2 清除自由基、抗氧化和预防衰老作用 | 第21-22页 |
| 2.4.3 抗肿瘤作用 | 第22页 |
| 2.4.4 抗病毒 | 第22页 |
| 2.4.5 修复肝损伤、抗疲劳作用 | 第22-23页 |
| 2.4.6 对酶活性的抑制作用 | 第23-24页 |
| 3 研究的目的和主要内容 | 第24-26页 |
| 3.1 研究的目的及意义 | 第24-25页 |
| 3.2 研究的主要内容 | 第25-26页 |
| 3.2.1 不同品种枣果实多糖含量分析 | 第25页 |
| 3.2.2 枣多糖提取工艺研究 | 第25页 |
| 3.2.3 枣多糖的分离纯化及其分子量范围的确定 | 第25页 |
| 3.2.4 枣多糖单糖组成测定 | 第25页 |
| 3.2.5 不同组分枣多糖对酪氨酸酶活性抑制效果分析 | 第25-26页 |
| 第二章 不同品种枣果实多糖含量分析 | 第26-32页 |
| 1 材料与方法 | 第26-28页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第26页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第26-27页 |
| 1.3 试验方法 | 第27-28页 |
| 1.3.1 供试品溶液的制备 | 第27页 |
| 1.3.2 对照品溶液的制备 | 第27页 |
| 1.3.3 测定波长的确定 | 第27页 |
| 1.3.4 线性关系考察 | 第27页 |
| 1.3.5 精密度实验 | 第27页 |
| 1.3.6 重复性实验 | 第27-28页 |
| 1.3.7 稳定性实验 | 第28页 |
| 1.3.8 加样回收率实验 | 第28页 |
| 1.3.9 多糖含量的计算 | 第28页 |
| 2 结果与分析 | 第28-31页 |
| 2.1 多糖含量测定方法的确定 | 第28-30页 |
| 2.1.1 线性关系考察结果 | 第28-29页 |
| 2.1.2 精密度试验结果 | 第29页 |
| 2.1.3 重复性试验结果 | 第29页 |
| 2.1.4 稳定性试验结果与分析 | 第29页 |
| 2.1.5 加样回收率试验结果与分析 | 第29-30页 |
| 2.2 不同品种枣多糖粗提物及其多糖含量分析 | 第30-31页 |
| 3 小结与讨论 | 第31-32页 |
| 第三章 枣多糖超声提取工艺的优化 | 第32-44页 |
| 1 材料与方法 | 第32-34页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第32页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第32页 |
| 1.3 试验方法 | 第32-34页 |
| 1.3.1 枣多糖超声提取单因素试验 | 第32-34页 |
| 1.3.2 单因素试验结果主成分分析 | 第34页 |
| 1.3.3 枣多糖超声提取正交试验 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-42页 |
| 2.1 枣多糖提取单因素试验 | 第34-36页 |
| 2.2 枣多糖提取单因素结果主成分分析 | 第36-40页 |
| 2.2.1 主成分研究指标选取 | 第37页 |
| 2.2.2 不同条件下多糖提取率数据标准化处理 | 第37-38页 |
| 2.2.3 主要成分个数确定 | 第38-39页 |
| 2.2.4 主成分综合模型构建 | 第39-40页 |
| 2.3 超声提取工艺正交试验 | 第40-42页 |
| 2.3.1 正交试验 | 第41-42页 |
| 2.3.2 最佳提取工艺验证 | 第42页 |
| 3 小结与讨论 | 第42-44页 |
| 第四章 枣多糖分离纯化及其分子量范围的确定 | 第44-56页 |
| 1 材料与方法 | 第44-47页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第44页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第44页 |
| 1.3 试验方法 | 第44-47页 |
| 1.3.1 供试品溶液的制备 | 第44-45页 |
| 1.3.2 木瓜蛋白酶脱枣多糖蛋白质的工艺 | 第45-46页 |
| 1.3.3 树脂动态吸附实验 | 第46页 |
| 1.3.4 树脂洗脱实验方法 | 第46-47页 |
| 1.3.5 多糖分子量范围的确定 | 第47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-55页 |
| 2.1 木瓜蛋白酶脱蛋白质试验 | 第47-51页 |
| 2.1.1 蛋白质线性关系考察 | 第47页 |
| 2.1.2 响应面工艺回归模型的建立及方差分析 | 第47-50页 |
| 2.1.3 验证试验 | 第50-51页 |
| 2.2 树脂动态吸附实验 | 第51-53页 |
| 2.2.1 供试液上样流速对树脂吸附效果 | 第51页 |
| 2.2.2 树脂最佳上样量实验 | 第51-52页 |
| 2.2.3 洗脱流速对树脂洗脱效果影响 | 第52-53页 |
| 2.3 枣多糖树脂洗脱实验结果 | 第53-54页 |
| 2.3.1 DEAE-52纤维素柱洗脱实验 | 第53页 |
| 2.3.2 SephadexG-100葡聚糖柱洗脱实验 | 第53-54页 |
| 2.4 各组分多糖分子量范围的确定 | 第54-55页 |
| 2.4.1 葡聚糖标准曲线的绘制 | 第54页 |
| 2.4.2 多糖分子量范围的确定 | 第54-55页 |
| 3 小结与讨论 | 第55-56页 |
| 第五章 枣多糖的单糖组成分析 | 第56-61页 |
| 1 材料与方法 | 第56-57页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第56页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第56页 |
| 1.3 试验方法 | 第56-57页 |
| 1.3.1 供试品的制备 | 第56-57页 |
| 1.3.2 单糖的GC测定 | 第57页 |
| 2 结果与分析 | 第57-60页 |
| 2.1 气相色谱分析 | 第57-58页 |
| 2.1.1 气相色谱条件 | 第57-58页 |
| 2.1.2 不同单糖保留时间的确定 | 第58页 |
| 2.1.3 线性关系考察 | 第58页 |
| 2.2 不同组分多糖中单糖分析 | 第58-60页 |
| 3 小结与讨论 | 第60-61页 |
| 第六章 枣多糖对酪氨酸酶抑制作用分析 | 第61-69页 |
| 1 材料与方法 | 第61-63页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第61页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第61页 |
| 1.3 试验方法 | 第61-63页 |
| 1.3.1 供试品的制备 | 第61页 |
| 1.3.2 标准曲线的绘制 | 第61-62页 |
| 1.3.3 不同组分枣多糖抑制酶活性的测定 | 第62页 |
| 1.3.4 不同浓度DTB_3在不同时间下对酶活力的影响 | 第62页 |
| 1.3.5 不同浓度DTB_3对酶活性抑制率的影响 | 第62页 |
| 1.3.6 DT_(B3)抑制酶活性动力学分析 | 第62页 |
| 1.3.7 多糖硫酸化修饰 | 第62-63页 |
| 1.3.8 多糖经硫酸化后对酶活抑制率的测定 | 第63页 |
| 1.3.9 氯化钡-明胶法测定多糖中硫酸根取代度 | 第63页 |
| 2 结果与分析 | 第63-67页 |
| 2.1 多糖对酪氨酸酶活性抑制 | 第63-66页 |
| 2.1.1 底物L-DOPA标准曲线 | 第63-64页 |
| 2.1.2 不同组分枣多糖对酶活性抑制分析 | 第64页 |
| 2.1.3 不同浓度DT_(B3)在不同时间下对酶活力的影响 | 第64-65页 |
| 2.1.4 不同浓度DT_(B3)对酶活性抑制率的影响 | 第65页 |
| 2.1.5 DT_(B3)抑制酶活性动力学分析 | 第65-66页 |
| 2.2 硫酸化修饰枣多糖对酪氨酸酶活性抑制效果 | 第66-67页 |
| 2.2.1 底物SO_4~(2-)(mg)标准曲线 | 第66页 |
| 2.2.2 不同组分硫酸酯化枣多糖对酶活抑制性效果分析 | 第66-67页 |
| 3 小结与讨论 | 第67-69页 |
| 全文结论与展望 | 第69-73页 |
| 1 结论 | 第69-71页 |
| 2 主要创新点 | 第71页 |
| 3 展望 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-81页 |
| 符号说明 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 作者简介 | 第83页 |
