| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第13-37页 |
| 1.1 引言 | 第13-14页 |
| 1.2 生物光学成像 | 第14-29页 |
| 1.2.1 有机荧光染料 | 第14-16页 |
| 1.2.2 上转换纳米材料 | 第16-18页 |
| 1.2.3 量子点 | 第18-20页 |
| 1.2.4 金团簇纳米材料 | 第20-29页 |
| 1.3 核磁共振成像（MRI） | 第29-31页 |
| 1.3.1 核磁共振成像原理 | 第30页 |
| 1.3.2 MRI造影剂 | 第30-31页 |
| 1.4 X射线计算机断层扫描（CT）成像 | 第31-33页 |
| 1.4.1 X射线成像原理 | 第32页 |
| 1.4.2 CT造影剂 | 第32-33页 |
| 1.5 论文的选题依据及实验方法 | 第33-37页 |
| 第2章 无标记的金团簇用于小鼠肾脏的光学/CT双模式成像 | 第37-51页 |
| 2.1 引言 | 第37-38页 |
| 2.2 实验材料和方法 | 第38页 |
| 2.2.1 实验材料和试剂 | 第38页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第38页 |
| 2.3 实验部分 | 第38-40页 |
| 2.3.1 基于BSA金团簇荧光探针的制备方法 | 第38-39页 |
| 2.3.2 探针制备条件的优化和稳定性的研究 | 第39页 |
| 2.3.3 探针的表征 | 第39-40页 |
| 2.3.4 小动物近红外活体荧光成像及体外探针组织分布成像 | 第40页 |
| 2.3.5 探针的CT信号性能表征和小动物活体CT成像 | 第40页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第40-50页 |
| 2.4.1 探针制备条件的优化和稳定性的研究 | 第40-42页 |
| 2.4.2 金团簇纳米探针的表征 | 第42-43页 |
| 2.4.3 探针的表征 | 第43-44页 |
| 2.4.4 探针的表征小动物近红外活体荧光成像及体外探针组织分布成像 | 第44-46页 |
| 2.4.5 探针的CT信号性能表征和小动物活体CT成像 | 第46-50页 |
| 2.5 本章小结 | 第50-51页 |
| 第3章 基于金团簇的光学/MRI/CT三模式成像探针制备及肿瘤活体成像研究 | 第51-79页 |
| 3.1 引言 | 第51-52页 |
| 3.2 实验材料和方法 | 第52-53页 |
| 3.2.1 实验材料和试剂 | 第52-53页 |
| 3.2.2 实验仪器表征 | 第53页 |
| 3.3 实验部分 | 第53-60页 |
| 3.3.1 AuGd NCs的合成 | 第53页 |
| 3.3.2 生物偶联法对AuGd NCs和叶酸进行偶联 | 第53-54页 |
| 3.3.3 材料的体外稳定性和细胞靶向成像 | 第54页 |
| 3.3.4 细胞的毒性试验 | 第54-55页 |
| 3.3.5 体外溶血实验 | 第55页 |
| 3.3.6 小鼠活体光学成像和探针的分布研究 | 第55-57页 |
| 3.3.7 材料的r1弛豫率的测试和T1加权的MRI活体成像 | 第57页 |
| 3.3.8 材料的HU值测试和小动物活体CT成像 | 第57-58页 |
| 3.3.9 材料的活体毒性研究 | 第58-59页 |
| 3.3.10 材料的产率计算及组织定量分布分析 | 第59-60页 |
| 3.4 实验结果及讨论 | 第60-77页 |
| 3.4.1 实验条件的探索及优化 | 第60-62页 |
| 3.4.2 探针的表征 | 第62-65页 |
| 3.4.3 叶酸与探针偶联的表征 | 第65-66页 |
| 3.4.4 细胞的靶向实验验证 | 第66-67页 |
| 3.4.5 细胞的毒性试验 | 第67-68页 |
| 3.4.6 体外溶血实验 | 第68-69页 |
| 3.4.7 小鼠活体光学成像和探针的分布研究 | 第69-72页 |
| 3.4.8 材料的r1弛豫率的测试和T1加权的MRI活体成像 | 第72-73页 |
| 3.4.9 材料的HU值测试和小动物活体CT成像 | 第73-76页 |
| 3.4.10 材料在组织分布的定量分析 | 第76-77页 |
| 3.4.11 组织的HE染色 | 第77页 |
| 3.5 本章小结 | 第77-79页 |
| 第4章 基于金团簇对于整合素受体、Her-2 受体等标志物诊断的相关性研究 | 第79-105页 |
| 4.1 引言 | 第79-81页 |
| 4.2 实验材料和方法 | 第81-82页 |
| 4.2.1 实验材料和试剂 | 第81页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第81-82页 |
| 4.3 整合素 α_(Ⅱb)β_3标记实验方案 | 第82-84页 |
| 4.3.1 血小板的提取 | 第82-83页 |
| 4.3.2 靶向整合素 α_(Ⅱb)β_3探针的合成 | 第83页 |
| 4.3.3 团簇的表征 | 第83页 |
| 4.3.4 血小板及细胞的靶向实验 | 第83-84页 |
| 4.4 表皮生长引子受体 2（HER-2）标记实验方案 | 第84-88页 |
| 4.4.1 乳腺癌细胞系SK-BR-3、MCF-7、MDA-MB-231、MDA-MB-361细胞复苏、培养、传代及冻存 | 第84-85页 |
| 4.4.2 靶向HER-2 探针材料的制备 | 第85-86页 |
| 4.4.3 基于多肽合成金团簇探针的表征 | 第86-87页 |
| 4.4.4 SV-Au团簇靶向细胞核研究 | 第87页 |
| 4.4.5 乳腺癌细胞系SK-BR-3、MDA-MB-231、MDA-MB-361、MCF-7细胞表面因子受体 2（her-2）靶向实验 | 第87-88页 |
| 4.5 整合素 α_(Ⅱb)β_3标记实验结果和讨论 | 第88-93页 |
| 4.5.1 全血中血小板的提取及形态学的变化 | 第88-89页 |
| 4.5.2 贴壁血小板的形态学的变化 | 第89页 |
| 4.5.3 将经离心提取的血小板随时间变化的形态学改变 | 第89-90页 |
| 4.5.4 CV肽合成团簇的表征 | 第90-91页 |
| 4.5.5 全血固定的血小板免疫荧光实验 | 第91页 |
| 4.5.6 贴壁血小板免疫荧光实验 | 第91-92页 |
| 4.5.7 CV金团簇靶向血小板整合素 α_(Ⅱb)β_3靶向实验 | 第92-93页 |
| 4.6 表皮生长因子受体 2（HER-2）标记实验结果和讨论 | 第93-103页 |
| 4.6.1 金团簇的合成及表征 | 第93-96页 |
| 4.6.2 KL6肽合成金团簇红外吸收光谱表征 | 第96-98页 |
| 4.6.3 KL6肽合成金团簇后自身结构变化的圆二色谱（CD）表征 | 第98页 |
| 4.6.4 KL6肽的靶向性研究 | 第98-99页 |
| 4.6.5 SV多肽合成金团簇对细胞荧光成像实验研究 | 第99-100页 |
| 4.6.6 偶联KL6多肽的SV金团簇荧光成像研究 | 第100-101页 |
| 4.6.7 偶联KL6多肽的SV金团簇与细胞核、细胞膜定位染料共定位研究 | 第101-103页 |
| 4.7 本章小结 | 第103-105页 |
| 结论 | 第105-109页 |
| 参考文献 | 第109-125页 |
| 攻读博士学位期间所发表的学术论文 | 第125-127页 |
| 攻读博士学位期间参加的国际会议 | 第127-129页 |
| 致谢 | 第129-130页 |
