| 本文的创新点 | 第5-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第16-44页 |
| 1.1 引言 | 第16页 |
| 1.2 酶的概述 | 第16-19页 |
| 1.2.1 酶的起源及其作用特点 | 第16-17页 |
| 1.2.1.1 酶的起源 | 第16页 |
| 1.2.1.2 酶的作用特点 | 第16-17页 |
| 1.2.2 酶的作用原理 | 第17-18页 |
| 1.2.2.1 分子过渡态与分子活化能 | 第17页 |
| 1.2.2.2 中间产物学说 | 第17-18页 |
| 1.2.2.3 诱导契合学说 | 第18页 |
| 1.2.3 酶的分类 | 第18页 |
| 1.2.4 酶在应用中存在的问题 | 第18-19页 |
| 1.3 固定化酶 | 第19-36页 |
| 1.3.1 固定化酶的概述 | 第20-22页 |
| 1.3.1.1 固定化酶的概念 | 第20页 |
| 1.3.1.2 固定化酶的经济市场 | 第20-21页 |
| 1.3.1.3 固定化酶的优点 | 第21-22页 |
| 1.3.2 固定化酶的固定方法 | 第22-34页 |
| 1.3.2.1 吸附法 | 第23-29页 |
| 1.3.2.2 包埋法 | 第29-31页 |
| 1.3.2.3 交联法 | 第31-34页 |
| 1.3.3 固定化酶的稳定性与活性的提高方法 | 第34-36页 |
| 1.3.3.1 固定化酶的稳定性提高方法 | 第34-35页 |
| 1.3.3.2 固定化酶的活性提高方法 | 第35-36页 |
| 1.4 固定化酶磁性载体材料研究 | 第36-42页 |
| 1.4.1 直接功能化的磁性粒子 | 第37页 |
| 1.4.2 磁性高分子微球 | 第37-42页 |
| 1.4.2.1 包埋法 | 第38-39页 |
| 1.4.2.2 单体聚合法 | 第39-40页 |
| 1.4.2.3 原位生成法 | 第40页 |
| 1.4.2.4 “可控/活性”自由基聚合法 | 第40-42页 |
| 1.5 选题依据与研究内容 | 第42-44页 |
| 第二章 扩展青霉脂肪酶(PEL)催化碳酸乙烯酯(EC)与甲醇反应生成碳酸二甲酯(DMC) | 第44-55页 |
| 2.1 引言 | 第44-46页 |
| 2.2 实验部分 | 第46-49页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第46页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第46页 |
| 2.2.3 脂肪酶转酯活力的测定 | 第46-47页 |
| 2.2.4 酶学特性的测定 | 第47-48页 |
| 2.2.4.1 酶作用的最适温度 | 第47页 |
| 2.2.4.2 酶作用的最适pH值 | 第47-48页 |
| 2.2.5 实验方法 | 第48-49页 |
| 2.2.5.1 PEL催化EC与甲醇的酯交换合成DMC | 第48页 |
| 2.2.5.2 EC的转化率、DMC的产率与选择性的计算 | 第48-49页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第49-54页 |
| 2.3.1 不同来源的生物酶的催化结果比较 | 第49页 |
| 2.3.2 EC/甲醇的摩尔比对催化结果的影响 | 第49-51页 |
| 2.3.3 酶的加入量对催化结果的影响 | 第51页 |
| 2.3.4 反应温度对催化结果的影响 | 第51-52页 |
| 2.3.5 反应时间对催化结果的影响 | 第52-53页 |
| 2.3.6 催化剂的重复利用性 | 第53-54页 |
| 2.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 第三章 CMC-PVA-lip催化碳酸乙烯酯与甲醇反应生成碳酸二甲酯 | 第55-66页 |
| 3.1 引言 | 第55-56页 |
| 3.2 实验部分 | 第56-58页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第56页 |
| 3.2.2 固定化酶的制备 | 第56页 |
| 3.2.3 蛋白质含量的测定 | 第56-57页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第57页 |
| 3.2.4.1 CMC-PVA-lip催化EC与甲醇的酯交换 | 第57页 |
| 3.2.4.2 EC的转化率、DMC的产率与选择性的计算 | 第57页 |
| 3.2.5 实验仪器 | 第57-58页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第58-65页 |
| 3.3.1 载体材料的结构与性质 | 第58-60页 |
| 3.3.2 催化的结果与讨论 | 第60-65页 |
| 3.3.2.1 不同载体的固定化酶的催化结果比较 | 第60-61页 |
| 3.3.2.2 EC/甲醇的摩尔比对催化结果的影响 | 第61页 |
| 3.3.2.3 酶的加入量对催化结果的影响 | 第61-62页 |
| 3.3.2.4 反应温度对催化结果的影响 | 第62-63页 |
| 3.3.2.5 反应时间对催化结果的影响 | 第63-64页 |
| 3.3.2.6 催化剂的重复利用性与储存稳定性 | 第64-65页 |
| 3.4 本章小结 | 第65-66页 |
| 第四章 磁性纤维素微球的制备以及其固定化酶在催化碳酸乙烯酯与甲醇反应生成碳酸二甲酯的研究 | 第66-78页 |
| 4.1 引言 | 第66-67页 |
| 4.2 实验部分 | 第67-70页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第67页 |
| 4.2.2 固定化酶的制备过程 | 第67-68页 |
| 4.2.2.1 纤维素微球的制备 | 第67-68页 |
| 4.2.2.2 磁性纤维素微球的制备 | 第68页 |
| 4.2.2.3 磁性纤维素微球的活化 | 第68页 |
| 4.2.2.4 磁性纤维素微球为载体的酶固定化 | 第68页 |
| 4.2.3 载体材料的表征 | 第68-69页 |
| 4.2.4 酶活性的测定 | 第69-70页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第70-77页 |
| 4.3.1 载体材料的结构与性质 | 第70-74页 |
| 4.3.2 催化的结果与讨论 | 第74-77页 |
| 4.3.2.1 不同载体固定酶的催化结果比较 | 第74-75页 |
| 4.3.2.2 酶的加入量对催化结果的影响 | 第75-76页 |
| 4.3.2.3 反应温度对催化结果的影响 | 第76页 |
| 4.3.2.4 催化剂的重复利用性 | 第76-77页 |
| 4.4 本章小结 | 第77-78页 |
| 第五章 壳聚糖/聚丙烯酸复合磁性纳米微球的制备以及其固定化酶在催化合成1,3-二取代脲中的研究 | 第78-94页 |
| 5.1 引言 | 第78-81页 |
| 5.2 实验部分 | 第81-83页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第81页 |
| 5.2.2 固定化酶的制备过程 | 第81-82页 |
| 5.2.2.1 CS/PAA磁性纳米球的制备 | 第81-82页 |
| 5.2.2.2 CS/PAA磁性纳米球的功能化 | 第82页 |
| 5.2.2.3 磁性纤维素微球为载体的酶固定化 | 第82页 |
| 5.2.3 载体材料的表征 | 第82-83页 |
| 5.2.4 酶活性的测定 | 第83页 |
| 5.2.5 1,3-二取代脲的制备过程 | 第83页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第83-93页 |
| 5.3.1 载体材料的结构与性质 | 第83-86页 |
| 5.3.2 固定化全过程的机理探讨 | 第86-89页 |
| 5.3.3 催化结果的讨论 | 第89-93页 |
| 5.3.3.1 游离酶的选择 | 第89页 |
| 5.3.3.2 反应温度对催化结果的影响 | 第89-90页 |
| 5.3.3.3 反应温度的重复利用性与储存稳定性 | 第90-93页 |
| 5.4 本章小结 | 第93-94页 |
| 第六章 磁性纤维素纳米晶体的制备以及其固定化酶研究初探 | 第94-102页 |
| 6.1 引言 | 第94-96页 |
| 6.2 实验部分 | 第96-97页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第96页 |
| 6.2.2 固定化酶的制备过程 | 第96-97页 |
| 6.2.2.1 酸水解法制备纤维素纳米晶体 | 第96页 |
| 6.2.2.2 磁性纤维素纳米晶体的制备 | 第96页 |
| 6.2.2.3 磁性纤维素纳米晶体的活化 | 第96-97页 |
| 6.2.2.4 磁性纤维素纳米晶体为载体的酶固定化 | 第97页 |
| 6.2.3 载体材料的表征 | 第97页 |
| 6.3 载体材料的结构与性质 | 第97-101页 |
| 6.4 本章小结 | 第101-102页 |
| 第七章 总结与展望 | 第102-105页 |
| 7.1 总结 | 第102-103页 |
| 7.2 展望 | 第103-105页 |
| 参考文献 | 第105-128页 |
| 攻博期间所取得的研究成果 | 第128-129页 |
| 致谢 | 第129页 |
