中文摘要 | 第3-4页 |
英文摘要 | 第4页 |
1 绪论 | 第7-20页 |
1.1 纳米材料在生物工程领域的应用 | 第7页 |
1.2 基于纳米材料的纳米药物控释系统的发展 | 第7-8页 |
1.3 基于纳米材料的纳米药物控释系统在肿瘤治疗中的应用 | 第8-18页 |
1.3.1 无机纳米材料 | 第10-14页 |
1.3.2 高分子纳米材料 | 第14-17页 |
1.3.3 复合纳米材料 | 第17-18页 |
1.4 设计思路和研究内容 | 第18-20页 |
1.4.1 设计思路 | 第18-19页 |
1.4.2 研究内容 | 第19-20页 |
2 pH响应性电荷反转纳米中空介孔硅药物控释系统的制备与表征 | 第20-39页 |
2.1 引言 | 第20页 |
2.2 实验材料 | 第20-22页 |
2.2.1 主要试剂 | 第20-21页 |
2.2.2 主要仪器 | 第21-22页 |
2.3 实验方法 | 第22-24页 |
2.3.1 纳米中空介孔硅的合成 | 第22页 |
2.3.2 纳米中空介孔硅的TEM电镜表征 | 第22页 |
2.3.3 2,3-二甲基马来酸酐改性壳聚糖(CS-DMA)的合成 | 第22页 |
2.3.4 2,3-二甲基马来酸酐改性壳聚糖的表征 | 第22-23页 |
2.3.5 pH响应性电荷反转纳米中空介孔硅药物控释系统的构建 | 第23页 |
2.3.6 pH响应性电荷反转纳米中空介孔硅药物控释系统的表征 | 第23页 |
2.3.7 pH响应性电荷反转纳米中空介孔硅药物控释系统药物装载量的测定 | 第23-24页 |
2.3.8 pH响应性电荷反转纳米中空介孔硅药物控释系统的药物释放效率测定 | 第24页 |
2.4 实验结果及讨论 | 第24-37页 |
2.4.1 2,3-二甲基马来酸酐改性壳聚糖的表征分析 | 第24-26页 |
2.4.2 改性前后的壳聚糖、HMSNs和HMSNs-DMA-CS的Zeta电位分析 | 第26-27页 |
2.4.3 HMSNs和HMSNs-DMA-CS的扫描、透射电镜表征及粒径分布检测 | 第27-29页 |
2.4.4 HMSNs-DMA-CS纳米颗粒的pH响应性电荷反转表征 | 第29-31页 |
2.4.5 HMSNs-DMA-CS在加血清PBS中的稳定性 | 第31-33页 |
2.4.6 HMSNs-DMA-CS纳米颗粒的载药量检测 | 第33-34页 |
2.4.7 HMSNs-DMA-CS纳米颗粒的热重分析 | 第34-35页 |
2.4.8 pH响应性电荷反转纳米中空介孔硅药物控释系统的释放特性 | 第35-37页 |
2.5 本章小结 | 第37-39页 |
3 pH响应性电荷反转纳米中空介孔硅药物控释系统抑制体外肝肿瘤细胞HepG2生长的生物学评价 | 第39-53页 |
3.1 引言 | 第39页 |
3.2 实验材料 | 第39-40页 |
3.2.1 实验细胞 | 第39页 |
3.2.2 主要试剂 | 第39页 |
3.2.3 主要仪器设备 | 第39-40页 |
3.3 实验内容 | 第40-43页 |
3.3.1 肝肿瘤细胞HepG2的体外培养 | 第40页 |
3.3.2 人正常肝细胞L-O2的体外培养 | 第40页 |
3.3.3 pH响应性电荷反转纳米中空介孔硅药物控释系统的细胞毒性检测 | 第40-41页 |
3.3.4 激光共聚焦观察肝肿瘤细胞HepG2在不同pH环境下对装载FITC电荷反转纳米中空介孔硅药物控释系统的内吞情况 | 第41-42页 |
3.3.5 激光共聚焦观察装载DOX电荷反转纳米中空介孔硅药物控释系统对肝肿瘤细胞HepG2在不同pH环境下诱导其凋亡的程度 | 第42页 |
3.3.6 细胞流式仪定量统计细胞凋亡状况 | 第42-43页 |
3.4 实验结果与讨论 | 第43-52页 |
3.4.1 pH响应性电荷反转纳米中空介孔硅药物控释系统的细胞毒性检测 | 第43-47页 |
3.4.2 激光共聚焦显微镜观察肝肿瘤细胞HepG2吞噬电荷反转纳米中空介孔硅HMSNs-DMA-CS的效率 | 第47-49页 |
3.4.3 装载DOX电荷反转纳米中空介孔硅HMSNs-DMA-CS@DOX在不同pH环境下对肝肿瘤细胞HepG2诱导的凋亡统计 | 第49-50页 |
3.4.4 细胞流式仪定量统计细胞凋亡状况 | 第50-52页 |
3.5 本章小结 | 第52-53页 |
4 实验结论及有待深入研究的内容 | 第53-54页 |
致谢 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-61页 |