| 摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第11-25页 |
| 1.1 甜瓜果肉颜色研究进展 | 第11-12页 |
| 1.2 甜瓜枯萎病研究进展 | 第12-16页 |
| 1.2.1 甜瓜枯萎病病原菌 | 第12-13页 |
| 1.2.2 甜瓜枯萎病发病症状 | 第13页 |
| 1.2.3 甜瓜枯萎病发病条件 | 第13-14页 |
| 1.2.4 甜瓜枯萎病病原菌致病原理及其传播方式 | 第14页 |
| 1.2.5 甜瓜枯萎病防治方法 | 第14-16页 |
| 1.3 甜瓜白粉病研究进展 | 第16-20页 |
| 1.3.1 甜瓜白粉病病原菌形态特征与分类 | 第16-17页 |
| 1.3.2 甜瓜白粉病发病症状 | 第17页 |
| 1.3.3 甜瓜白粉病发病条件 | 第17-18页 |
| 1.3.4 甜瓜白粉病病原菌致病原理及传播方式 | 第18页 |
| 1.3.5 甜瓜白粉病防治方法 | 第18-19页 |
| 1.3.6 甜瓜白粉病抗性鉴定 | 第19-20页 |
| 1.4 植物性别的研究进展 | 第20-21页 |
| 1.4.1 甜瓜性别分化的遗传基因定位 | 第20-21页 |
| 1.5 分子标记概述 | 第21-23页 |
| 1.5.1 分子标记及特点 | 第21-22页 |
| 1.5.2 分子标记种类 | 第22页 |
| 1.5.3 分子标记辅助选择的运用 | 第22-23页 |
| 1.6 研究目的意义 | 第23-24页 |
| 1.7 试验技术路线 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-32页 |
| 2.1 试验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 甜瓜试验品种 | 第25页 |
| 2.1.2 试验药品 | 第25页 |
| 2.1.3 试剂配制方法 | 第25-26页 |
| 2.1.4 试验仪器 | 第26-27页 |
| 2.2 田间试验与方法 | 第27-28页 |
| 2.2.1 田间试验时间与地点 | 第27页 |
| 2.2.2 甜瓜育苗 | 第27-28页 |
| 2.2.3 甜瓜栽培管理技术 | 第28页 |
| 2.3 分子试验设计与方法 | 第28-32页 |
| 2.3.1 试验材料 | 第28-29页 |
| 2.3.2 分子试验设计与方法 | 第29页 |
| 2.3.3 采用改良CTAB法提取基因组DNA | 第29页 |
| 2.3.4 DNA检测 | 第29-30页 |
| 2.3.5 CAPS分子标记的开发 | 第30页 |
| 2.3.6 CAPS分子标记PCR扩增体系及其反应辦 | 第30-31页 |
| 2.3.7 CAPS分子标记的酶切体系 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-41页 |
| 3.1 分子标记的引物序列 | 第32页 |
| 3.2 甜瓜基因组DNA提取 | 第32-33页 |
| 3.3 果肉颜色CAPS分子标记的验证 | 第33-35页 |
| 3.3.1 目的基因的扩增 | 第33页 |
| 3.3.2 酶切结果鉴定 | 第33-35页 |
| 3.4 枯萎病CAPS分子标记的验证 | 第35-37页 |
| 3.4.1 目的基因的扩增 | 第35-36页 |
| 3.4.2 酶切结果鉴定 | 第36-37页 |
| 3.5 抗白粉病分子标记验证 | 第37-39页 |
| 3.5.1 目的基因扩增 | 第37页 |
| 3.5.2 酶切结果鉴定 | 第37-39页 |
| 3.6 性别分化分子标记验证 | 第39-40页 |
| 3.6.1 目的基因扩增 | 第39页 |
| 3.6.2 酶切结果鉴定 | 第39-40页 |
| 3.7 聚合基因植株的筛选 | 第40-41页 |
| 4 讨论 | 第41-44页 |
| 4.1 DNA提取及PCR反应体系的优化 | 第41页 |
| 4.2 CAPS分子标记的应用 | 第41-42页 |
| 4.3 基因聚合在植物育种中的运用 | 第42-44页 |
| 5 结论 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-53页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第53页 |