| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-32页 |
| 1.1 病程相关蛋白 | 第12-14页 |
| 1.1.1 PRs 的特性 | 第12-13页 |
| 1.1.2 PRs 的诱导表达 | 第13页 |
| 1.1.3 PRs 在植物诱导抗病性中的作用 | 第13-14页 |
| 1.2 β-1,3-葡聚糖酶与植物的抗病性 | 第14-18页 |
| 1.2.1 分类及结构特点 | 第14-16页 |
| 1.2.2 在抗真菌病害中的作用 | 第16-18页 |
| 1.3 β-1,3-葡聚糖酶在小麦的诱导抗锈性中的研究 | 第18-20页 |
| 1.3.1 小麦条锈病 | 第18页 |
| 1.3.2 抗锈机理的研究概况 | 第18-19页 |
| 1.3.3 锈菌与小麦互作体系中β-1,3-葡聚糖酶的研究 | 第19-20页 |
| 1.4 病原菌无毒基因的研究进展 | 第20-23页 |
| 1.4.1 基因对基因学说 | 第20页 |
| 1.4.2 研究进展 | 第20-23页 |
| 1.5 真菌遗传转化的研究现状 | 第23-27页 |
| 1.5.1 电击法 | 第24页 |
| 1.5.2 基因枪法 | 第24页 |
| 1.5.3 显微注射法 | 第24页 |
| 1.5.4 激光微束穿孔法 | 第24页 |
| 1.5.5 醋酸锂法 | 第24页 |
| 1.5.6 PEG-CaCl_2 法 | 第24-25页 |
| 1.5.7 转座法 | 第25页 |
| 1.5.8 REMI 法 | 第25页 |
| 1.5.9 ATMT 法 | 第25-27页 |
| 1.6 农杆菌介导丝状真菌遗传转化的研究进展 | 第27-29页 |
| 1.6.1 转化机理 | 第27-28页 |
| 1.6.2 转化特点 | 第28-29页 |
| 1.6.3 ATMT 在真菌基因组学研究中的应用 | 第29页 |
| 1.7 专性寄生真菌的遗传转化研究 | 第29-31页 |
| 1.8 本研究的目的和意义 | 第31-32页 |
| 第二章 条锈菌诱导的小麦TaGlu 基因的克隆及其表达调控分析 | 第32-54页 |
| 引言 | 第32页 |
| 2.1 材料 | 第32-33页 |
| 2.1.1 供试菌种和小麦品种 | 第32页 |
| 2.1.2 接种和培养 | 第32-33页 |
| 2.1.3 样品采集 | 第33页 |
| 2.2 方法 | 第33-41页 |
| 2.2.1 基因组全长克隆 | 第33-35页 |
| 2.2.2 序列分析 | 第35页 |
| 2.2.3 条锈菌及激素诱导下的表达谱分析 | 第35-38页 |
| 2.2.4 抗体制备 | 第38-40页 |
| 2.2.5 Western blot 分析 | 第40页 |
| 2.2.6 蛋白免疫细胞化学定位 | 第40-41页 |
| 2.3 结果与分析 | 第41-52页 |
| 2.3.1 TaGlu 基因组全长的克隆 | 第41页 |
| 2.3.2 TaGlu 的序列分析 | 第41-46页 |
| 2.3.3 TaGlu 的表达模式分析 | 第46-47页 |
| 2.3.4 抗体制备 | 第47-49页 |
| 2.3.5 Western blot | 第49-50页 |
| 2.3.6 免疫细胞化学定位 | 第50-52页 |
| 2.4 讨论 | 第52-54页 |
| 2.4.1 TaGLU 的分类 | 第52页 |
| 2.4.2 TaGlu 的表达谱分析 | 第52-54页 |
| 第三章 条锈菌无毒基因筛选体系建立的初探 | 第54-66页 |
| 引言 | 第54-55页 |
| 3.1 试剂及材料 | 第55页 |
| 3.1.1 材料 | 第55页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第55页 |
| 3.2 方法 | 第55-60页 |
| 3.2.1 小麦内生细菌的分离 | 第55-57页 |
| 3.2.2 载体构建 | 第57-60页 |
| 3.2.3 pEDV6::avrRxo1 在植物中的表达 | 第60页 |
| 3.3 结果与分析 | 第60-64页 |
| 3.3.1 内生菌的分离及鉴定 | 第60-61页 |
| 3.3.2 载体构建 | 第61-63页 |
| 3.3.3 在植物体内的表达 | 第63-64页 |
| 3.4 讨论 | 第64-66页 |
| 第四章 根癌农杆菌介导的小麦条锈菌遗传转化体系构建的探索 | 第66-90页 |
| 引言 | 第66页 |
| 4.1 材料和方法 | 第66-75页 |
| 4.1.1 供试菌种和小麦品种 | 第66页 |
| 4.1.2 载体构建 | 第66-70页 |
| 4.1.3 转化农杆菌 | 第70-71页 |
| 4.1.4 条锈菌夏孢子在不同浓度潮霉素下的萌发情况 | 第71页 |
| 4.1.5 根癌农杆菌介导的遗传转化 | 第71-73页 |
| 4.1.6 纯化筛选 | 第73页 |
| 4.1.7 转化子检测 | 第73-75页 |
| 4.1.8 毒性变化转化子的筛选 | 第75页 |
| 4.2 结果分析 | 第75-87页 |
| 4.2.1 载体构建 | 第75-77页 |
| 4.2.2 条锈菌夏孢子在不同浓度潮霉素下的萌发情况 | 第77-78页 |
| 4.2.3 根癌农杆菌介导的条锈菌转化 | 第78-86页 |
| 4.2.4 毒性突变的转化子的筛选 | 第86-87页 |
| 4.3 讨论 | 第87-90页 |
| 4.3.1 供试菌系 | 第87-88页 |
| 4.3.2 转化时期 | 第88页 |
| 4.3.3 四种渗透方法 | 第88页 |
| 4.3.4 启动子 | 第88-89页 |
| 4.3.5 筛选标记 | 第89-90页 |
| 全文结论 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-106页 |
| 附录 1 实验所需试剂配置 | 第106-111页 |
| 附录 2 实验所用仪器 | 第111-112页 |
| 附录 3 缩略词 | 第112-114页 |
| 致谢 | 第114-115页 |
| 作者简介 | 第115页 |
