| 缩略语中英文对照 | 第8-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 绪 | 第13-33页 |
| 1.1 大黄鱼研究现状 | 第13-17页 |
| 1.2 鱼类免疫系统 | 第17-23页 |
| 1.3 鱼类抗菌肽 | 第23-29页 |
| 1.4 转录组学研究 | 第29-31页 |
| 1.5 本研究的目的与意义 | 第31-32页 |
| 1.6 本研究技术路线 | 第32-33页 |
| 第二章 大黄鱼感染刺激隐核虫病前后肝脏转录组分析 | 第33-49页 |
| 2.1 材料 | 第33页 |
| 2.1.1 生物材料 | 第33页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第33页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第33页 |
| 2.2 方法 | 第33-36页 |
| 2.2.1 刺激隐核虫的人工感染 | 第33-35页 |
| 2.2.2 转录组实验流程 | 第35页 |
| 2.2.3 测序数据分析流程 | 第35-36页 |
| 2.3 结果 | 第36-47页 |
| 2.3.1 大黄鱼感染症状 | 第36-37页 |
| 2.3.2 大黄鱼感染刺激隐核虫病前后肝脏转录组分析 | 第37-47页 |
| 2.4 讨论 | 第47-49页 |
| 第三章 大黄鱼组蛋白H1、H2A和H2B基因序列克隆、分析以及刺激隐核虫对其mRNA的诱导表达 | 第49-90页 |
| 3.1 材料 | 第49-51页 |
| 3.1.1 样品采集 | 第49页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第49-50页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第50页 |
| 3.1.4 主要溶液配制 | 第50-51页 |
| 3.2 方法 | 第51-65页 |
| 3.2.1 总RNA提取 | 第51-52页 |
| 3.2.2 cDNA第一链合成 | 第52页 |
| 3.2.3 H1、H2A和H2B的mRNA中间片段克隆 | 第52-57页 |
| 3.2.4 RACE扩增H1、H2A及H2B的mRNA全序列 | 第57-60页 |
| 3.2.5 H1、H2A及H2B mRNA组织分布 | 第60-63页 |
| 3.2.6 刺激隐核虫对大黄鱼组蛋白的mRNA诱导表达 | 第63页 |
| 3.2.7 生物信息学分析和数据统计分析 | 第63-65页 |
| 3.3 大黄鱼组蛋白H1、H2B和H2A基因克隆及分析结果 | 第65-84页 |
| 3.3.1 大黄鱼总RNA提取 | 第65页 |
| 3.3.2 大黄鱼组蛋白H1基因克隆、特征分析及mRNA的组织表达 | 第65-71页 |
| 3.3.3 大黄鱼组蛋白H2A基因克隆、特征分析及mRNA的组织表达 | 第71-76页 |
| 3.3.4 大黄鱼组蛋白H2B基因克隆、特征分析及mRNA的组织表达 | 第76-80页 |
| 3.3.5 讨论 | 第80-84页 |
| 3.4 刺激隐核虫对大黄鱼H1、H2A和H2B mRNA的诱导表达 | 第84-90页 |
| 3.4.1 刺激隐核虫对大黄鱼组蛋白H1 mRNA的诱导表达 | 第84页 |
| 3.4.2 刺激隐核虫对大黄鱼组蛋白H2A mRNA的诱导表达 | 第84-86页 |
| 3.4.3 刺激隐核虫对大黄鱼组蛋白H2B mRNA的诱导表达 | 第86-88页 |
| 3.4.4 讨论 | 第88-90页 |
| 第四章 总结与展望 | 第90-92页 |
| 4.1 总结 | 第90-91页 |
| 4.2 创新点 | 第91页 |
| 4.3 展望 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-100页 |
| 致谢 | 第100-102页 |
| 在学期间参加的科研项目及发表的论文 | 第102页 |
