| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 第1章 前言 | 第11-14页 |
| 第2章 材料与方法 | 第14-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第14-18页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第14-15页 |
| 2.1.2 主要试剂配置 | 第15-17页 |
| 2.1.3 主要仪器及耗材 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-24页 |
| 2.2.1 记录与参比电极的维护 | 第18页 |
| 2.2.2 急性分离脑片的制备 | 第18-19页 |
| 2.2.3 脑片海马CA1区锥体神经元形态学观察 | 第19页 |
| 2.2.4 玻璃微电极的拉制 | 第19-20页 |
| 2.2.5 膜片钳记录模式及基本操作步骤 | 第20-21页 |
| 2.2.6 大鼠脑片海马CA1区锥体神经元VGCCs电流记录 | 第21页 |
| 2.2.7 锥体神经元VGCCs电流密度I-V曲线记录 | 第21-22页 |
| 2.2.8 大鼠海马CA1区锥体神经元HVA钙通道门控特性分析 | 第22-23页 |
| 2.2.9 锥体神经元钙振荡的记录 | 第23-24页 |
| 2.3 统计分析 | 第24-25页 |
| 第3章 结果 | 第25-34页 |
| 3.1 大鼠海马CA1区锥体神经元VGCCs电流 | 第25-27页 |
| 3.1.1 锥体神经元HVA钙通道电流 | 第25-26页 |
| 3.1.2 锥体神经元LVA钙通道电流 | 第26-27页 |
| 3.2 氯化铈暴露对VGCCs电流的影响 | 第27-30页 |
| 3.2.1 正常对照组I_(HVA)、I_(LVA)标化电流幅度变化 | 第27-28页 |
| 3.2.2 氯化铈暴露对I_(HVA)标化电流幅度的影响 | 第28-29页 |
| 3.2.3 氯化铈暴露对I_(LVA)标化电流幅度的影响 | 第29-30页 |
| 3.3 氯化铈暴露对HVA钙通道特性的影响 | 第30-31页 |
| 3.4 氯化铈暴露对Ach诱导海马锥体神经元钙振荡的影响 | 第31-34页 |
| 第4章 讨论 | 第34-37页 |
| 4.1 氯化铈对VGCCs的作用及分析 | 第34-35页 |
| 4.2 氯化铈对Ach诱导海马神经元钙振荡的作用及分析 | 第35-37页 |
| 第5章 结论 | 第37-38页 |
| 第6章 展望 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-44页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第44-45页 |
| 综述 | 第45-53页 |
| 参考文献 | 第51-53页 |
