摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 引言 | 第9-13页 |
1.1 柚皮素的分布 | 第9页 |
1.2 柚皮素的结构及生物学活性 | 第9-10页 |
1.3 柚皮素的获取方式 | 第10-11页 |
1.3.1 化学方法 | 第10页 |
1.3.2 生物方法 | 第10-11页 |
1.4 研究意义及创新点 | 第11-13页 |
1.4.1 研究意义 | 第11-12页 |
1.4.2 创新点 | 第12-13页 |
第二章 中药化橘红中主要活性成分柚皮苷的提取分离及结构鉴定 | 第13-16页 |
2.1 材料 | 第13-14页 |
2.1.1 试验材料 | 第13页 |
2.1.2 试剂 | 第13页 |
2.1.3 主要试验仪器与设备 | 第13-14页 |
2.2 试验方法 | 第14页 |
2.2.1 化橘红成分的粗提取 | 第14页 |
2.2.3 高效液相色谱条件 | 第14页 |
2.3 结果与分析 | 第14-15页 |
2.3.1 化橘红中主要活性成分的提取分离 | 第14页 |
2.3.2 化橘红中主要活性成分的结构鉴定 | 第14-15页 |
2.4 小结 | 第15-16页 |
第三章 产柚苷酶细菌菌株的分离筛选与鉴定 | 第16-21页 |
3.1 材料 | 第16页 |
3.1.1 样品来源 | 第16页 |
3.1.2 筛选培养基 | 第16页 |
3.1.3 药品与试剂 | 第16页 |
3.1.4 主要试验仪器与设备 | 第16页 |
3.2 试验方法 | 第16-17页 |
3.2.1 柚皮苷转化菌的分离筛选 | 第16页 |
3.2.2 菌株革兰氏染色及耐氧性测定 | 第16-17页 |
3.2.3 柚皮苷转化菌株的 16S rDNA 序列分析 | 第17页 |
3.2.4 生理生化鉴定 | 第17页 |
3.3 结果与分析 | 第17-20页 |
3.3.1 柚皮苷转化菌株的分离筛选 | 第17-18页 |
3.3.2 柚皮苷转化菌株的菌体及菌落形态特征 | 第18页 |
3.3.3 革兰氏染色与耐氧特性 | 第18页 |
3.3.4 16S rDNA 序列分析 | 第18-19页 |
3.3.5 生理生化特征 | 第19-20页 |
3.4 小结 | 第20-21页 |
第四章 产柚苷酶细菌菌株对柚皮苷的转化特性 | 第21-24页 |
4.1 材料 | 第21页 |
4.1.1 菌株 | 第21页 |
4.1.2 培养基 | 第21页 |
4.1.3 药品与试剂 | 第21页 |
4.1.4 主要试验仪器与设备 | 第21页 |
4.2 试验方法 | 第21-22页 |
4.2.1 菌株转化动态测定 | 第21页 |
4.2.2 菌株转化能力测定 | 第21-22页 |
4.3 结果与分析 | 第22-23页 |
4.3.1 菌株对柚皮苷的转化动态 | 第22页 |
4.3.2 菌株对柚皮苷的转化能力 | 第22-23页 |
4.4 小结 | 第23-24页 |
第五章 巴氏链球菌 AUH-JLD109 转化条件优化研究 | 第24-32页 |
5.1 材料 | 第24页 |
5.1.1 菌株 | 第24页 |
5.1.2 培养基 | 第24页 |
5.1.3 药品与试剂 | 第24页 |
5.1.4 主要试验仪器与设备 | 第24页 |
5.2 试验方法 | 第24-25页 |
5.2.1 大肠杆菌 AUH-D2-1 与巴氏链球菌 AUH-JLD109 混合培养 | 第24-25页 |
5.2.2 混菌培养物在 BHI 培养基中对底物柚皮苷转化能力测定 | 第25页 |
5.2.3 混菌培养物在牛肉膏蛋白胨基础培养基中对底物柚皮苷转化能力测定 | 第25页 |
5.2.4 正交设计优化混合菌培养基 | 第25页 |
5.3 结果与分析 | 第25-31页 |
5.3.1 混菌培养物在 BHI 培养基中对底物柚皮苷转化能力测定 | 第25-26页 |
5.3.2 混菌培养物在牛肉膏蛋白胨基础培养基中对底物柚皮苷转化能力测定 | 第26页 |
5.3.3 碳源对混菌转化活性的影响 | 第26-27页 |
5.3.4 氮源对混菌转化活性的影响 | 第27页 |
5.3.5 金属离子对混合菌株转化活性的影响 | 第27-28页 |
5.3.6 磷酸盐对混菌转化活性的影响 | 第28-29页 |
5.3.7 正交试验 | 第29-31页 |
5.4 小结 | 第31-32页 |
结论 | 第32-33页 |
参考文献 | 第33-37页 |
在读期间发表的学术论文 | 第37-39页 |
作者简历 | 第39-41页 |
致谢 | 第41-42页 |