致谢 | 第4-5页 |
中文摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
英文缩略词表 | 第9-13页 |
1 绪论 | 第13-19页 |
参考文献 | 第15-19页 |
2 主要实验材料和仪器 | 第19-22页 |
2.1 主要实验材料和试剂 | 第19-21页 |
2.2 主要实验仪器 | 第21页 |
2.3 相关溶液的配制 | 第21-22页 |
3 实验方法 | 第22-32页 |
3.1 细胞培养 | 第22-23页 |
3.2 小干扰RNA(small interfering RNA,siRNA)的转染 | 第23页 |
3.3 RT-qPCR | 第23-25页 |
3.4 总蛋白提取 | 第25-26页 |
3.5 膜蛋白、胞浆蛋白和核蛋白提取 | 第26-27页 |
3.6 Western Blot | 第27-29页 |
3.7 免疫荧光 | 第29-30页 |
3.8 流式细胞测定ABCG2功能 | 第30页 |
3.9 统计学分析 | 第30-32页 |
4 实验结果 | 第32-48页 |
4.1 可溶性尿酸盐能够促进人肠道上皮细胞HT-29、Caco-2细胞中ABCG2及PDZK1的表达 | 第32-36页 |
4.2 可溶性尿酸盐能够改变HT-29、Caco-2细胞ABCG2的亚细胞定位 | 第36-40页 |
4.3 PDZK1能够调节ABCG2在HT-29、Caco-2细胞中的表达 | 第40-42页 |
4.4 尿酸通过NLRP3/ASC/Caspase-1炎症体调节PDZK1/ABCG2在HT-29、Caco-2细胞中的表达 | 第42-44页 |
4.5 尿酸对PDZK1/ABCG2在HT-29、Caco-2细胞中表达的调节与NF-κB通路无关 | 第44-46页 |
4.6 尿酸部分通过PI3K/Akt信号通路调节PDZK1/ABCG2在HT-29、Caco-2细胞中的表达 | 第46-48页 |
5 讨论 | 第48-50页 |
6 结论 | 第50-51页 |
7 参考文献 | 第51-54页 |
综述 | 第54-71页 |
参考文献 | 第61-71页 |
作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第71页 |