摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
文献综述 | 第12-28页 |
第一章 TGFβ 超家族及BMP15概述 | 第12-23页 |
1.1 TGFβ 超家族概述 | 第12-19页 |
1.1.1 配体 | 第12-14页 |
1.1.2 受体 | 第14-16页 |
1.1.3 Smad蛋白 | 第16页 |
1.1.4 TGFβ 超家族的信号传递 | 第16-18页 |
1.1.5 TGFβ 超家族的在卵泡发育中的作用 | 第18-19页 |
1.1.6 TGFβ 超家族的在雄性生殖细胞发育中的作用 | 第19页 |
1.2 BMP15概述 | 第19-23页 |
1.2.1 BMP15基因结构和定位 | 第19-20页 |
1.2.2 BMP15基因多态性及其对繁殖力的影响 | 第20-21页 |
1.2.3 BMP15的表达 | 第21-22页 |
1.2.4 BMP15的功能 | 第22-23页 |
第二章 雄性生殖干细胞研究进展 | 第23-28页 |
2.1 mGSCS雄性生殖干细胞的产生 | 第23-24页 |
2.2 mGSCS表面标记因子 | 第24页 |
2.3 mGSCS体外培养 | 第24-26页 |
2.3.1 mGSCs分离方法 | 第24-25页 |
2.3.2 mGSCs纯化方法 | 第25页 |
2.3.3 mGSCs培养体系 | 第25-26页 |
2.4 mGSCS诱导分化 | 第26-27页 |
2.5 本研究目的与意义 | 第27-28页 |
试验研究 | 第28-51页 |
第三章 绒山羊mGSCS的培养鉴定及体外自发分化 | 第28-35页 |
3.1 材料与方法 | 第28-30页 |
3.1.1 材料 | 第28-29页 |
3.1.2 方法 | 第29-30页 |
3.1.3 数据分析 | 第30页 |
3.2 结果与分析 | 第30-32页 |
3.2.1 mGSCs鉴定及纯化效果 | 第30页 |
3.2.2 mGSCs分化潜能 | 第30-32页 |
3.3 讨论 | 第32-34页 |
3.3.1 mGSCs分离培养及鉴定 | 第32-33页 |
3.3.2 mGSCs分化潜能 | 第33-34页 |
3.4 小结 | 第34-35页 |
第四章 山羊BMP15基因生物信息学分析 | 第35-44页 |
4.1 材料与方法 | 第35-36页 |
4.1.1 数据来源 | 第35页 |
4.1.2 生物信息学分析 | 第35-36页 |
4.2 结果与分析 | 第36-42页 |
4.2.1 山羊BMP15基因序列分析 | 第36页 |
4.2.2 山羊BMP15蛋白序列分析 | 第36-37页 |
4.2.3 物种间同源性分析 | 第37页 |
4.2.4 BMP15编码的蛋白疏水性分析 | 第37页 |
4.2.5 BMP15蛋白信号肽分析 | 第37-38页 |
4.2.6 BMP15蛋白的跨膜区预测 | 第38页 |
4.2.7 BMP15蛋白二级结构预测 | 第38-40页 |
4.2.8 BMP15蛋白三级结构预测 | 第40页 |
4.2.9 BMP15的功能域预测 | 第40-42页 |
4.3 讨论 | 第42-43页 |
4.4 小结 | 第43-44页 |
第五章 过表达BMP15对绒山羊mGSCS增殖分化的影响 | 第44-51页 |
5.1 材料与方法 | 第44-46页 |
5.1.1 试验材料 | 第44页 |
5.1.2 主要试剂 | 第44页 |
5.1.3 RT-PCR检测BMP15在成年绒山羊组织表达特异性 | 第44-45页 |
5.1.4 BMP15-PB513B载体构建 | 第45-46页 |
5.1.5 重组质粒BMP15-PB513B转染mGSCs | 第46页 |
5.1.6 RT-PCR检测转染后BMP15及mGSCs增殖分化相关基因表达情况 | 第46页 |
5.1.7 数据统计 | 第46页 |
5.2 结果与分析 | 第46-48页 |
5.2.1 BMP15 mRNA在成年绒山羊组织中表达谱 | 第46-47页 |
5.2.2 BMP15过表达载体的构建 | 第47页 |
5.2.3 转染后BMP15及mGSCs增殖分化相关基因的表达量 | 第47-48页 |
5.3 讨论 | 第48-50页 |
5.4 小结 | 第50-51页 |
结论 | 第51-52页 |
有待进一步研究的问题 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-68页 |
附录 | 第68-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
作者简介 | 第71页 |