| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-18页 |
| 研究现状、成果 | 第13-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-18页 |
| 一、骨髓间充质干细胞（BMSCs）的分离、培养和鉴定 | 第18-35页 |
| 1.1 对象和方法 | 第19-23页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第19-21页 |
| 1.1.2 实验方法 | 第21-23页 |
| 1.1.3 数据统计 | 第23页 |
| 1.2 结果 | 第23-27页 |
| 1.2.1 BMSCs的原代分离和培养 | 第23-24页 |
| 1.2.2 流式细胞仪鉴定BMSCs的表面标记蛋白表达 | 第24页 |
| 1.2.3 亚低温上调BMSCs中蛋白的SUMO化修饰水平 | 第24-27页 |
| 1.2.4 亚低温处理BMSCs可诱发SUMO核浆移位 | 第27页 |
| 1.3 讨论 | 第27-33页 |
| 1.3.1 神经干细胞（NSCs）的发现与神经干细胞移植 | 第28-29页 |
| 1.3.2 骨髓间充质干细胞（BMSCs）的来源与生物学特征 | 第29-30页 |
| 1.3.3 BMSCs的体外培养、鉴定和神经诱导分化 | 第30-33页 |
| 1.4 小结 | 第33-35页 |
| 二、亚低温上调SUMO化修饰保护缺氧的BMSCs | 第35-53页 |
| 2.1 对象和方法 | 第36-44页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第36页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第36-37页 |
| 2.1.3 具体试剂以及耗材分析 | 第37-38页 |
| 2.1.4 实验溶液 | 第38-40页 |
| 2.1.5 实验方法 | 第40-44页 |
| 2.1.6 数据统计 | 第44页 |
| 2.2 结果 | 第44-48页 |
| 2.2.1 SiUbc9可显著降低BMSCs中Ubc9的表达水平 | 第44页 |
| 2.2.2 亚低温上调缺氧诱导下的BMSCs内SUMO化修饰水平 | 第44-47页 |
| 2.2.3 亚低温降低缺氧诱导下的BMSCs凋亡和LDH分泌 | 第47-48页 |
| 2.3 讨论 | 第48-51页 |
| 2.3.1 SUMO化修饰与神经系统疾病的关系 | 第48-49页 |
| 2.3.2 SUMO化修饰与亚低温脑保护的关系 | 第49-50页 |
| 2.3.3 SUMO化修饰未来的研究方向和任务 | 第50-51页 |
| 2.4 小结 | 第51-53页 |
| 三、亚低温联合BMSCs移植治疗大鼠脑梗死的实验研究 | 第53-66页 |
| 3.1 对象和方法 | 第54-59页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第54页 |
| 3.1.2 实验试剂和耗材 | 第54页 |
| 3.1.3 实验动物 | 第54-55页 |
| 3.1.4 实验操作和步骤 | 第55-57页 |
| 3.1.5 大鼠神经功能评价（mNSS评分）和数据统计分析 | 第57-59页 |
| 3.2 结果 | 第59-61页 |
| 3.2.1 BMSCs经化学试剂法体外神经诱导分化的结果 | 第59页 |
| 3.2.2 BMSCs经体外化学试剂诱导后细胞免疫荧光检测结果 | 第59-60页 |
| 3.2.3 亚低温联合BMSCs移植促进MACO大鼠神经功能恢复 | 第60-61页 |
| 3.3 讨论 | 第61-65页 |
| 3.3.1 骨髓间充质干细胞（BMSCs）治疗脑梗死的研究现状 | 第61-62页 |
| 3.3.2 亚低温联合BMSCs治疗脑梗死的探讨 | 第62-63页 |
| 3.3.3 临床应用MSCs治疗脑梗死以及所面临的问题 | 第63-65页 |
| 3.4 小结 | 第65-66页 |
| 全文结论 | 第66-67页 |
| 论文创新点 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-79页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第79-80页 |
| 附录 | 第80-81页 |
| 综述 SUMO化修饰在神经科学领域中的研究进展 | 第81-94页 |
| 综述参考文献 | 第89-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 个人简历 | 第95页 |
