| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 研究现状、成果 | 第13-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-16页 |
| 一、肺癌细胞系中PRDM1与Aiolos的相关性 | 第16-25页 |
| 1.1 材料和方法 | 第16-19页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第16-17页 |
| 1.1.2 实验方法 | 第17-19页 |
| 1.2 结果 | 第19-24页 |
| 1.2.1 Microarray分析显示PRDM1和Aiolos有相关性 | 第19-22页 |
| 1.2.2 在肺癌细胞系中PRDM1和Aiolos的表达呈负相关性 | 第22页 |
| 1.2.3 Aiolos对PRDM1的抑制作用 | 第22-23页 |
| 1.2.4 肺癌细胞和正常细胞系中PRDM1的表达分析 | 第23-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24页 |
| 1.4 小结 | 第24-25页 |
| 二、PRDM1在非小细胞肺癌中的生物学功能 | 第25-48页 |
| 2.1 材料和方法 | 第25-35页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第27-35页 |
| 2.2 结果 | 第35-45页 |
| 2.2.1 PRDM1-shRNA慢病毒载体的构建 | 第35-36页 |
| 2.2.2 PRDM1-shRNA慢病毒包装和A549细胞的感染 | 第36-37页 |
| 2.2.3 转录水平和翻译水平检测的PRDM1的下调效果 | 第37-38页 |
| 2.2.4 下调PRDM1表达促进细胞的体外侵袭能力 | 第38-39页 |
| 2.2.5 下调PRDM1表达促进细胞的黏附能力 | 第39-40页 |
| 2.2.6 下调PRDM1表达改变细胞三维培养的形状 | 第40-41页 |
| 2.2.7 下调PRDM1表达改变抗失巢凋亡能力 | 第41-42页 |
| 2.2.8 下调PRDM1不表达改变细胞的增殖能力 | 第42-43页 |
| 2.2.9 下调PRDM1降低细胞的迁移能力 | 第43-44页 |
| 2.2.10 Real-time PCR和Western blot检测下调PRDM1细胞的表达变化 | 第44-45页 |
| 2.3 讨论 | 第45-46页 |
| 2.4 小结 | 第46-48页 |
| 三、PRDM1对裸鼠肿瘤转移的影响 | 第48-53页 |
| 3.1 材料和方法 | 第48-50页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第48页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第48-50页 |
| 3.2 结果 | 第50-51页 |
| 3.2.1 下调PRDM1表达，尾静脉注射裸鼠，观察裸鼠的生存时间 | 第50-51页 |
| 3.2.2 下调PRDM1表达，尾静脉注入裸鼠，各个器官的肿瘤转移情况 | 第51页 |
| 3.3 讨论 | 第51-52页 |
| 3.4 小结 | 第52-53页 |
| 四、转录因子Aiolos对PRDM1的转录调控 | 第53-61页 |
| 4.1 材料和方法 | 第53-57页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第53页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第53-57页 |
| 4.2 结果 | 第57-60页 |
| 4.2.1 染色质免疫共沉淀检测Aiolos与PRDM1基因的启动子区的结合 | 第57-58页 |
| 4.2.2 不同肿瘤细胞中PRDM1荧光素酶报告基因的活性 | 第58-59页 |
| 4.2.3 过表达Aiolos对PRDM1荧光素酶报告基因的活性改变 | 第59-60页 |
| 4.3 讨论 | 第60页 |
| 4.4 小结 | 第60-61页 |
| 全文结论 | 第61-62页 |
| 论文创新点 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第67-68页 |
| 综述 PRDM家族在肿瘤发生发展中的作用 | 第68-87页 |
| 综述参考文献 | 第78-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
