中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
前言 | 第11页 |
研究现状、成果 | 第11-12页 |
研究目的、方法 | 第12-13页 |
1 对象和方法 | 第13-21页 |
1.1 细胞系及实验动物 | 第13页 |
1.2 主要抗体和实验试剂及耗材 | 第13页 |
1.3 主要溶液及试剂配制 | 第13-14页 |
1.4 影像学扫描仪器、数据分析软件与对比剂 | 第14页 |
1.5 实验设计 | 第14-15页 |
1.6 实验方法 | 第15-17页 |
1.6.1 人结肠癌细胞株(HT29)培养 | 第15-16页 |
1.6.2 建立荷HT29裸鼠移植瘤模型 | 第16页 |
1.6.3 贝伐单抗处理荷HT29裸鼠移植瘤建立动物模型 | 第16-17页 |
1.7 能谱CT成像 | 第17-18页 |
1.7.1 扫描前准备 | 第17页 |
1.7.2 GSI模式CT平扫 | 第17页 |
1.7.3 能谱CT增强扫描 | 第17页 |
1.7.4 能谱CT后处理 | 第17-18页 |
1.8 病理标本处理与观察 | 第18-20页 |
1.9 统计学分析 | 第20-21页 |
2 结果 | 第21-34页 |
2.1 两组肿瘤生长情况比较 | 第21页 |
2.2 两组肿瘤三期增强扫描肿瘤中心及肿瘤边缘碘含量标准化值(mg/ml) | 第21-23页 |
2.3 治疗第七天各期能谱CT扫描实验组和对照组的肿瘤边缘区、肿瘤中心区和同期肝脏内非血管区的碘含量测量 | 第23页 |
2.4 病理检查结果 | 第23-25页 |
2.5 病理结果与能谱CT结果对照 | 第25-34页 |
3 讨论 | 第34-38页 |
3.1 能谱CT成像 | 第34页 |
3.2 抗血管生成治疗机制 | 第34页 |
3.3 能谱CT成像无创性评价肿瘤抗血管生成早期疗效 | 第34-35页 |
3.4 VEGF表达及MVD结果分析 | 第35-36页 |
3.5 实验的局限性与展望 | 第36-38页 |
结论 | 第38-39页 |
参考文献 | 第39-41页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第41-42页 |
综述 能谱CT在肿瘤性病变的应用研究进展 | 第42-58页 |
综述参考文献 | 第53-58页 |
致谢 | 第58-59页 |