摘要 | 第6-7页 |
ABSTRACT | 第7-8页 |
前言 | 第12-13页 |
文献综述 | 第13-34页 |
第一章 苦马豆素的生物学活性及细胞毒性作用研究进展 | 第13-23页 |
1.1 苦马豆素的发现及其理化特性 | 第13-14页 |
1.2 苦马豆素的抗肿瘤作用 | 第14-17页 |
1.2.1 SW对肿瘤细胞的直接抑制作用 | 第14-15页 |
1.2.2 SW改变肿瘤细胞表面的糖基化作用 | 第15页 |
1.2.3 SW对抗肿瘤药物的协同作用 | 第15-16页 |
1.2.4 SW诱导肿瘤细胞凋亡作用 | 第16页 |
1.2.5 SW抗肿瘤的临床运用 | 第16-17页 |
1.3 苦马豆素的免疫调节作用及抗病毒作用 | 第17-19页 |
1.3.1 SW对巨噬细胞的影响 | 第17-18页 |
1.3.2 SW对NK细胞的影响 | 第18页 |
1.3.3 SW对骨髓细胞的影响 | 第18-19页 |
1.3.4 SW的抗病毒作用 | 第19页 |
1.4 苦马豆素的细胞毒性作用及诱导细胞凋亡 | 第19-22页 |
1.4.1 SW对实质器官正常细胞的毒性损伤 | 第19-20页 |
1.4.2 SW对神经细胞的毒性损伤 | 第20-21页 |
1.4.3 SW诱导正常细胞凋亡 | 第21-22页 |
1.5 展望 | 第22-23页 |
第二章 细胞凋亡的研究进展 | 第23-34页 |
2.1 细胞凋亡的概述 | 第23-25页 |
2.2 细胞凋亡的检测 | 第25-28页 |
2.2.1 细胞形态学改变检测 | 第25-26页 |
2.2.2 DNA片段化检测 | 第26页 |
2.2.3 Caspases、切割底物、调控物和抑制物的检测 | 第26-27页 |
2.2.4 细胞膜改变的检测 | 第27页 |
2.2.5 全组织的凋亡染色检测 | 第27-28页 |
2.2.6 线粒体的检测 | 第28页 |
2.3 细胞凋亡的调控因子 | 第28-30页 |
2.3.1 Caspase家族 | 第28-29页 |
2.3.2 Bcl-2 家族 | 第29-30页 |
2.4 细胞凋亡信号通路的研究 | 第30-33页 |
2.4.1 死亡受体通路 | 第30-31页 |
2.4.2 线粒体通路 | 第31-33页 |
2.5 展望 | 第33-34页 |
试验研究 | 第34-57页 |
第三章 苦马豆素致BRL-3A细胞凋亡的形态学检测 | 第34-44页 |
3.1 材料 | 第34-35页 |
3.1.1 细胞系 | 第34页 |
3.1.2 苦马豆素 | 第34页 |
3.1.3 主要试剂和仪器 | 第34-35页 |
3.2 方法 | 第35-36页 |
3.2.1 细胞培养与冻存 | 第35页 |
3.2.2 细胞核Hoechst33258染色 | 第35页 |
3.2.3 流式细胞术检测 | 第35-36页 |
3.2.4 结果统计分析 | 第36页 |
3.3 结果 | 第36-41页 |
3.3.1 SW致BRL-3A细胞凋亡的细胞核形态学观察 | 第36-38页 |
3.3.2 Annexin V-FITC/PI双染定量测定细胞凋亡 | 第38-41页 |
3.4 讨论 | 第41-43页 |
3.5 小结 | 第43-44页 |
第四章 苦马豆素致BRL-3A细胞凋亡信号转导通路的研究 | 第44-57页 |
4.1 材料 | 第44-45页 |
4.1.1 细胞系与苦马豆素 | 第44页 |
4.1.2 主要试剂 | 第44-45页 |
4.1.3 主要仪器 | 第45页 |
4.2 方法 | 第45-50页 |
4.2.1 全蛋白的提取 | 第45-46页 |
4.2.2 BCA法测定蛋白质浓度 | 第46页 |
4.2.3 Western blot检测各凋亡因子的表达情况 | 第46-50页 |
4.2.4 统计学分析 | 第50页 |
4.3 结果 | 第50-54页 |
4.3.1 Caspase 3/8/9 的相对表达 | 第50-51页 |
4.3.2 Fas/Fas L的相对表达 | 第51-53页 |
4.3.3 Bax/Bcl-2 的相对表达 | 第53-54页 |
4.4 讨论 | 第54-56页 |
4.5 小结 | 第56-57页 |
结论 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-67页 |
附录 | 第67-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
作者简介 | 第71页 |