| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 文献综述 | 第10-17页 |
| 1. 组蛋白修饰 | 第10页 |
| 2. 组蛋白乙酰化修饰 | 第10-11页 |
| 3. 组蛋白乙酰转移酶(HATs) | 第11-12页 |
| 4. 组蛋白乙酰转移酶Elp3 | 第12-15页 |
| 4.1 Elongator复合物 | 第12-13页 |
| 4.2 组蛋白乙酰转移酶Elp3的功能 | 第13-15页 |
| 4.2.1 Elp3在微生物中的功能 | 第13-14页 |
| 4.2.2 Elp3在植物中的功能 | 第14页 |
| 4.2.3 Elp3在哺乳动物中的功能 | 第14-15页 |
| 4.2.4 Elp3在昆虫中的功能 | 第15页 |
| 5. 研究目的和意义 | 第15-17页 |
| 1 前言 | 第17-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-32页 |
| 2.1 供试虫源 | 第19页 |
| 2.2 主要试剂 | 第19页 |
| 2.3 主要仪器 | 第19-20页 |
| 2.4 总RNA提取 | 第20-21页 |
| 2.5 cDNA模板的合成 | 第21页 |
| 2.6 赤拟谷盗Elp3基因RT-PCR扩增 | 第21-26页 |
| 2.6.1 引物设计与合成 | 第21页 |
| 2.6.2 Elp3基因的RT-PCR扩增 | 第21-22页 |
| 2.6.3 胶回收 | 第22-23页 |
| 2.6.4 PCR产物纯化 | 第23页 |
| 2.6.5 感受态细胞的制备 | 第23-24页 |
| 2.6.6 连接反应 | 第24页 |
| 2.6.7 连接产物转化 | 第24页 |
| 2.6.8 筛选重组质粒 | 第24-25页 |
| 2.6.9 菌液PCR鉴定 | 第25页 |
| 2.6.10 序列分析 | 第25-26页 |
| 2.7 赤拟谷盗Elp3基因的mRNA的表达分析 | 第26-28页 |
| 2.7.1 cDNA模板合成 | 第26-27页 |
| 2.7.2 荧光定量PCR | 第27-28页 |
| 2.8 赤拟谷盗Elp3基因的RNAi研究 | 第28-31页 |
| 2.8.1 双链RNA(dsRNA)合成 | 第28页 |
| 2.8.2 PCR产物回收 | 第28-29页 |
| 2.8.3 转录 | 第29页 |
| 2.8.4 dsRNA的纯化 | 第29-30页 |
| 2.8.5 注射dsRNA | 第30-31页 |
| 2.9 Elp3基因对于氧化应激反应的调控作用 | 第31-32页 |
| 2.9.1 过氧化氢酶基因的mRNA表达水平检测 | 第31页 |
| 2.9.2 过氧化氢处理 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-42页 |
| 3.1 赤拟谷盗Elp3基因的克隆与生物信息学分析 | 第32-36页 |
| 3.2 赤拟谷盗Elp3基因在不同发育阶段的mRNA表达水平分析 | 第36-37页 |
| 3.3 Elp3基因的RNA干扰效率分析 | 第37-42页 |
| 3.3.1 RNA干扰效率分析 | 第37-38页 |
| 3.3.2 RNA干扰表型分析 | 第38-40页 |
| 3.3.3 E1p3基因对过氧化氢酶基因的调控作用 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-45页 |
| 4.1 赤拟谷盗Elp3基因的序列特征 | 第42-43页 |
| 4.2 赤拟谷盗Elp3基因在不同发育阶段的mRNA表达水平分析 | 第43页 |
| 4.3 赤拟谷盗Elp3基因在生长发育中的功能 | 第43-44页 |
| 4.4 赤拟谷盗Elp3基因在适应氧化胁迫中的作用 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文目录 | 第52-53页 |
