| 摘要 | 第1-4页 |
| Summary | 第4-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第7-15页 |
| 1 牦牛研究概况 | 第7页 |
| 2 促卵泡素（follicle-stimulating hormone, FSH）研究进展 | 第7-10页 |
| ·FSH 的化学结构与性质 | 第7-8页 |
| ·FSH 的分泌与代谢 | 第8页 |
| ·FSH 的生理功能 | 第8页 |
| ·促卵泡素 β 亚基(follicle-stimulating hormone β,FSH β)基因研究进展 | 第8-10页 |
| 3 FSHR 基因的研究进展 | 第10-13页 |
| ·FSHR 基因分子结构 | 第10-11页 |
| ·FSHR 基因 | 第11页 |
| ·FSHR 基因功能 | 第11-12页 |
| ·FSHR 基因5′端侧翼与繁殖性状的关系研究进展 | 第12页 |
| ·FSHR 基因第10 外显子与繁殖性状的关系 | 第12-13页 |
| 4 PCR-HRM 和PCR-SSCP 技术简介 | 第13-14页 |
| ·高分辨率融解曲线（HRM） | 第13-14页 |
| ·PCR-SSCP 技术简介 | 第14页 |
| 5 研究目的和意义 | 第14-15页 |
| 第二章 天祝白牦牛FSH 和FSHR 基因的多态性分析 | 第15-31页 |
| 1 实验材料 | 第15页 |
| ·实验动物 | 第15页 |
| ·实验所用的化学药品和实验仪器 | 第15页 |
| 2 实验方法 | 第15-20页 |
| ·天祝白牦牛全基因组DNA 的提取 | 第15页 |
| ·天祝白牦牛全基因组DNA 纯度和浓度的检测 | 第15-16页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测DNA 降解度 | 第15-16页 |
| ·Thermo 毛细管分光光度计检测DNA 纯度及浓度的判别 | 第16页 |
| ·PCR-HRM 引物的设计 | 第16页 |
| ·引物的稀释 | 第16页 |
| ·PCR-HRM 反应过程 | 第16页 |
| ·PCR-HRM 反应程序 | 第16页 |
| ·PCR 反应扩增过程 | 第16-18页 |
| ·12μL PCR 反应体系(表 2-2) | 第17页 |
| ·PCR 反应过程 | 第17-18页 |
| ·HRM-48 扫描及测序 | 第18页 |
| ·HRM-PCR 反应步骤 | 第18-19页 |
| ·PCR-SSCP 多态性分析 | 第19页 |
| ·SSCP 过程 | 第19-20页 |
| ·PCR-SSCP 基因分型 | 第20页 |
| ·测序 | 第20页 |
| ·统计分析 | 第20页 |
| 3 天祝白牦牛基因组DNA 的检测 | 第20-27页 |
| ·天祝白牦牛FSH β基因5′端调控区PCR 扩增结果效果 | 第21页 |
| ·天祝白牦牛FSHR 基因5′端PCR 扩增结果 | 第21页 |
| ·天祝白牦牛FSHR 基因第10 外显子PCR 扩增结果 | 第21-22页 |
| ·PCR-HRM 扫描结果 | 第22-23页 |
| ·PCR-SSCP 扩增结果 | 第23页 |
| ·PCR-SSCP 法基因分型结果 | 第23-26页 |
| ·天祝白牦牛FSH、FSHR 基因不同基因型测序结果 | 第26-27页 |
| 4 讨论 | 第27-31页 |
| ·试验样本的选择 | 第27页 |
| ·血样的采集和基因组DNA 提取方法的改进 | 第27页 |
| 4 3 优化PCR 扩增条件 | 第27-28页 |
| ·影响HRM 分析结果的因素 | 第28页 |
| ·荧光染料 | 第28-29页 |
| ·PCR 产物 | 第29页 |
| ·PCR-SSCP 缺陷 | 第29-31页 |
| 结论 | 第31-32页 |
| 致谢 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-36页 |
| 导师简介 | 第36-37页 |
| 作者简介 | 第37-40页 |
| 资助项目 | 第40页 |
