| 摘要 | 第8-12页 |
| ABSTRACT | 第12-15页 |
| 缩略词表 | 第16-17页 |
| 第一篇 综述 组蛋白修饰与细胞分化 | 第17-32页 |
| 一、组蛋白修饰 | 第17-21页 |
| 二、干细胞分化过程组蛋白修饰 | 第21-27页 |
| 1 胚胎干细胞分化过程组蛋白修饰 | 第21-22页 |
| 2 成体干细胞分化过程组蛋白修饰 | 第22-27页 |
| 2.1 骨髓间充质干细胞分化过程中组蛋白修饰 | 第22-23页 |
| 2.2 造血干细胞分化过程组蛋白修饰 | 第23-25页 |
| 2.3 神经干细胞分化过程组蛋白修饰 | 第25-26页 |
| 2.4 肌肉干细胞化过程组蛋白修饰 | 第26页 |
| 2.5 脂肪间充质干细胞分化过程组蛋白修饰 | 第26-27页 |
| 参考文献 | 第27-32页 |
| 第二篇 TSA和SAHA对阿尔巴斯白绒山羊脂肪间充质干细胞向脂肪细胞和神经细胞分化的影响 | 第32-63页 |
| 第一章 TSA和SAHA对阿尔巴斯白绒山羊脂肪间充质干细胞H3K9乙酰化作用 | 第32-44页 |
| 前言 | 第32-33页 |
| 1 材料 | 第33-34页 |
| 1.1 主要仪器和设备 | 第33页 |
| 1.2 实验试剂及耗材 | 第33-34页 |
| 1.3 细胞及培养液 | 第34页 |
| 2 实验方法 | 第34-37页 |
| 2.1 gADSCs培养及生长曲线的绘制 | 第34页 |
| 2.2 MTT法分析TSA和SAHA处理对于gADSCs增殖活性的影响 | 第34页 |
| 2.3 免疫荧光检测TSA和SAHA处理对于gADSCs组蛋白H3K9乙酰化的影响 | 第34-35页 |
| 2.4 Western blot分析TSA和SAHA处理对于gADSCs组蛋白H3K9乙酰化水平的影响 | 第35-36页 |
| 2.4.1 细胞核蛋白提取 | 第35页 |
| 2.4.2 BCA法测定蛋白质浓度 | 第35-36页 |
| 2.4.3 蛋白裂解 | 第36页 |
| 2.4.4 Western blot分析 | 第36页 |
| 2.5 Q-PCR分析TSA和SAHA处理对于gADSC中HDACs转录水平变化 | 第36-37页 |
| 2.6 Western blot分析TSA和SAHA处理对于gADSC中HDACs蛋白水平变化 | 第37页 |
| 2.7 数据统计分析 | 第37页 |
| 3 实验结果 | 第37-41页 |
| 3.1 gADSCs的生长曲线 | 第37-38页 |
| 3.2 TSA和SAHA处理对gADSCs增殖活性的影响 | 第38-39页 |
| 3.3 免疫荧光和Western blot检测TSA和SAHA处理对gADSCs组蛋白H3K9乙酰化水平的影响 | 第39-40页 |
| 3.4 TSA和SAHA处理对于gADSCs细胞中HDACs表达的影响 | 第40-41页 |
| 4 讨论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-44页 |
| 第二章 TSA和SAHA上调组蛋白H3K9乙酰化水平对绒山羊脂肪间充质干细胞增殖、凋亡和多能性相关基因的影响 | 第44-52页 |
| 前言 | 第44-45页 |
| 1 材料 | 第45页 |
| 1.1 主要仪器和设备 | 第45页 |
| 1.2 实验试剂及耗材 | 第45页 |
| 1.3 实验细胞及培养液 | 第45页 |
| 2 实验方法 | 第45-48页 |
| 2.1 TSA和SAHA处理后gADSCs周期的检测 | 第45-46页 |
| 2.2 TSA和SAHA处理后gADSCs凋亡的检测 | 第46页 |
| 2.3 Q-PCR检测TSA和SAHA处理后gADSCs增殖、凋亡和多能性基因转录水平 | 第46-47页 |
| 2.4 Western blot检测TSA和SAHA处理后gADSCs增殖、凋亡和多能性相关基因的蛋白水平变化 | 第47页 |
| 2.5 数据统计分析 | 第47-48页 |
| 3 实验结果 | 第48-50页 |
| 3.1 TSA和SAHA处理引起细胞周期停滞和凋亡 | 第48页 |
| 3.2 增殖、凋亡和多能性相关基因的Q-PCR检测 | 第48-49页 |
| 3.3 Western blot检测增殖、凋亡和多能性相关基因表达 | 第49-50页 |
| 4 讨论 | 第50页 |
| 参考文献 | 第50-52页 |
| 第三章 TSA和SAHA上调H3K9乙酰化水平对绒山羊脂肪间充质干细胞向脂肪细胞和神经细胞分化的影响 | 第52-63页 |
| 前言 | 第52-53页 |
| 1 材料 | 第53-54页 |
| 1.1 主要仪器和设备 | 第53页 |
| 1.2 实验试剂及耗材 | 第53页 |
| 1.3 实验细胞及培养液 | 第53-54页 |
| 2 实验方法 | 第54-56页 |
| 2.1 TSA和SAHA处理对gADSCs诱导脂肪细胞分化的分析 | 第54-55页 |
| 2.1.1 脂肪细胞诱导分化 | 第54页 |
| 2.1.2 油红O染色鉴定 | 第54页 |
| 2.1.3 Q-PCR检测脂肪细胞分化相关基因 | 第54-55页 |
| 2.2 TSA和SAHA处理对gADSCs诱导神经细胞分化的分析 | 第55-56页 |
| 2.2.1 神经细胞诱导分化 | 第55页 |
| 2.2.2 免疫荧光鉴定神经细胞分化 | 第55页 |
| 2.2.3 Q-PCR检测神经细胞分化相关基因 | 第55-56页 |
| 2.3 数据统计分析 | 第56页 |
| 3 实验结果 | 第56-60页 |
| 3.1 TSA和SAHA处理促进gADSCs向脂肪细胞分化 | 第56-58页 |
| 3.2 TSA和SAHA处理促进gADSCs向神经细胞分化 | 第58-60页 |
| 4 讨论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 攻读学位期间发表的学位论文 | 第66页 |
