| 致谢 | 第4-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩写清单 | 第14-15页 |
| 1 引言 | 第15-17页 |
| 2 文献综述 | 第17-37页 |
| 2.1 侧流层析技术(LFB)的发展历史 | 第17页 |
| 2.2 LFB检测形式 | 第17-21页 |
| 2.2.1 条带形式 | 第17-19页 |
| 2.2.2 棉线形式 | 第19-20页 |
| 2.2.3 垂直流形式和基于注射器的生物传感器 | 第20-21页 |
| 2.3 带有样品预处理的LFB | 第21-24页 |
| 2.3.1 简单的样品预处理 | 第21-22页 |
| 2.3.2 基于膜的样品预处理 | 第22-23页 |
| 2.3.3 磁分离样品预处理 | 第23页 |
| 2.3.4 集样品预处理和检测于一体的器件 | 第23-24页 |
| 2.4 带流体控制的LFB | 第24-27页 |
| 2.4.1 交叉流策略 | 第25页 |
| 2.4.2 延迟释放策略 | 第25-26页 |
| 2.4.3 控制释放策略 | 第26页 |
| 2.4.4 其他的流体控制策略 | 第26-27页 |
| 2.5 可靠性提高的LFB | 第27-29页 |
| 2.5.1 添加另一“验证测试线” | 第27-28页 |
| 2.5.2 采用不同的检测方法 | 第28-29页 |
| 2.6 其他发展 | 第29-30页 |
| 2.7 LFB商业化的代表 | 第30-35页 |
| 2.7.1 基于GNP的LFB | 第30-32页 |
| 2.7.2 基于荧光纳米颗粒标记的和手机的LFB | 第32-34页 |
| 2.7.3 LFB芯片 | 第34-35页 |
| 2.8 本论文主要研究内容 | 第35-37页 |
| 3 基于Y形DNA和目标物循环放大的miRNA三线层析检测 | 第37-49页 |
| 3.1 绪论 | 第37-38页 |
| 3.2 实验部分 | 第38-41页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第38页 |
| 3.2.2 试剂及材料 | 第38-39页 |
| 3.2.3 DNA-GNPs偶合物的制备过程 | 第39页 |
| 3.2.4 链霉亲和素/DNA偶合物的制备过程 | 第39-40页 |
| 3.2.5 LFNAB的制备 | 第40页 |
| 3.2.6 癌细胞的裂解 | 第40-41页 |
| 3.2.7 酶辅助的miRNA目标循环实验 | 第41页 |
| 3.2.8 LFNAB的实验过程 | 第41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-48页 |
| 3.3.1 检测原理 | 第41-43页 |
| 3.3.2 聚丙烯酰胺凝胶电泳实验 | 第43-44页 |
| 3.3.3 LFNAB制备的优化 | 第44-45页 |
| 3.3.4 分析特征 | 第45-47页 |
| 3.3.5 LFNAB的选择性 | 第47页 |
| 3.3.6 HeLa细胞裂解液中miR-16的分析 | 第47-48页 |
| 3.4 小结 | 第48-49页 |
| 4 基于不同纳米粒子的侧流层析生物传感器(LFSB)对蛋白的检测 | 第49-57页 |
| 4.1 绪论 | 第49-50页 |
| 4.2 实验部分 | 第50-53页 |
| 4.2.1 实验仪器 | 第50页 |
| 4.2.2 试剂及材料 | 第50-51页 |
| 4.2.3 纳米材料的制备 | 第51页 |
| 4.2.4 纳米粒子--抗体偶合物的合成 | 第51-52页 |
| 4.2.5 LFSB的制备 | 第52页 |
| 4.2.6 测定步骤 | 第52-53页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第53-56页 |
| 4.3.1 基于纳米粒子的LFSB的检测原理 | 第53页 |
| 4.3.2 LFSB标记物的比较 | 第53-56页 |
| 4.4 结论 | 第56-57页 |
| 5 以磁性碳纳米管(MCNT)为标记物在血液中对蛋白进行检测 | 第57-69页 |
| 5.1 绪论 | 第57-58页 |
| 5.2 实验部分 | 第58-60页 |
| 5.2.1 实验仪器 | 第58页 |
| 5.2.2 试剂及材料 | 第58-59页 |
| 5.2.3 磁性碳纳米管(MCNT)的和磁性纳米粒子(MNP)制备 | 第59页 |
| 5.2.4 MCNT-Ab_1和MNP-Ab_1偶合物的制备 | 第59-60页 |
| 5.2.5 LFSB的制备 | 第60页 |
| 5.2.6 测试步骤 | 第60页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第60-67页 |
| 5.3.1 MCNT的制备和表征 | 第60-62页 |
| 5.3.2 MCNT-LFSB的检测原理 | 第62-63页 |
| 5.3.3 实验参数优化 | 第63-65页 |
| 5.3.4 分析性能 | 第65页 |
| 5.3.5 重现性和特异性 | 第65-66页 |
| 5.3.6 全血中检测兔IgG | 第66-67页 |
| 5.4 小结 | 第67-69页 |
| 6 基于磁性碳纳米管的侧流层析试纸条生物传感器用于全血中的碳水化合物抗原19-9(CA 19-9)的快速检测 | 第69-80页 |
| 6.1 绪论 | 第69-70页 |
| 6.2 实验部分 | 第70-72页 |
| 6.2.1 实验仪器 | 第70-71页 |
| 6.2.2 试剂及材料 | 第71页 |
| 6.2.3 检测前偶合物和LFSB的制备 | 第71页 |
| 6.2.4 测试步骤 | 第71-72页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第72-79页 |
| 6.3.1 MCNT-LFSB检测血液中CA 19-9的原理 | 第72-74页 |
| 6.3.2 检测参数的优化 | 第74-75页 |
| 6.3.3 缓冲溶液中的分析性能 | 第75-76页 |
| 6.3.4 全血中CA 19-9分析 | 第76-79页 |
| 6.4 小结 | 第79-80页 |
| 7 基于磁性碳纳米管为标记物的侧流层析生物传感器对血液中胰腺癌标记物补体因子B(CFB)的检测 | 第80-90页 |
| 7.1 绪论 | 第80-81页 |
| 7.2 实验部分 | 第81-83页 |
| 7.2.1 实验仪器 | 第81页 |
| 7.2.2 试剂及材料 | 第81-82页 |
| 7.2.3 检测前偶合物和LFSB制备 | 第82页 |
| 7.2.4 测试步骤 | 第82-83页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第83-89页 |
| 7.3.1 基于MCNT的CFB检测的LFSB的原理 | 第83-84页 |
| 7.3.2 实验参数优化 | 第84-86页 |
| 7.3.3 单克隆或多克隆抗体作为检测抗体的LFSB性能比较 | 第86-87页 |
| 7.3.4 流动缓冲溶液中的分析性能 | 第87-88页 |
| 7.3.5 血液中的分析性能 | 第88页 |
| 7.3.6 LFSB与商业ELISA试剂盒的比较 | 第88-89页 |
| 7.4 小结 | 第89-90页 |
| 8 结论 | 第90-93页 |
| 参考文献 | 第93-123页 |
| 作者简历及在学研究成果 | 第123-127页 |
| 学位论文数据集 | 第127页 |
