摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-9页 |
第一章 文献综述 | 第9-23页 |
1 小麦的远缘杂交起源 | 第10页 |
2 远缘杂种的染色体行为 | 第10-21页 |
·染色体消除与单倍体 | 第12-15页 |
·未减数配子和双二倍体 | 第15-19页 |
·部分同源染色体配对和易位系 | 第19-21页 |
3 本文的立题依据 | 第21-23页 |
第二章 未减数配子形成基因的分子标记 | 第23-45页 |
1. 材料和方法 | 第26-30页 |
·实验材料 | 第26页 |
·实验方法 | 第26-30页 |
·染色体制片和探针制备 | 第26-27页 |
·表型鉴定 | 第27-28页 |
·QTL定位 | 第28页 |
·DNA、RNA的提取和cDNA的合成 | 第28页 |
·引物设计、PCR扩增和转化测序 | 第28-30页 |
·Real-time PCR检测 | 第30页 |
·统计分析 | 第30页 |
2 结果与分析 | 第30-41页 |
·T.turgidum×Ae.tauschii杂种加倍能力 | 第30-31页 |
·T.turgidum×Ae.tauschii杂种雄配子形成过程 | 第31-34页 |
·减数分裂二分体频率和单倍体自交结实率之间高度相关 | 第34-35页 |
·QTL定位未减数配子基因 | 第35-37页 |
·寻找小麦TAM/CYCA1;2基因的同源基因 | 第37-41页 |
3. 讨论 | 第41-45页 |
·FDR途径的细胞减数分裂时期Ⅰ延长 | 第41页 |
·FDR形成过程 | 第41-42页 |
·QTug.sau-3B是一个参与小麦多倍化的依赖于单倍体的QTL | 第42-43页 |
·TAM和QTug.sau-3B可能是同源基因 | 第43页 |
·Ttam基因在高加倍频率杂种中低表达 | 第43-45页 |
第三章 人工合成小麦-黑麦杂种D基因组优先消除形成六倍体小黑麦 | 第45-59页 |
1. 材料与方法 | 第47-48页 |
·实验材料 | 第47页 |
·实验方法 | 第47-48页 |
·细胞学观察 | 第47页 |
·农艺性状考察 | 第47-48页 |
2. 结果与分析 | 第48-55页 |
·SHW-L1×rye杂交组合 | 第48-52页 |
·Syn-SAU-8×rye杂交组合 | 第52-54页 |
·Syn-SAU-18×rye杂交组合 | 第54-55页 |
3. 讨论 | 第55-59页 |
·人工合成小麦-黑麦杂种F_1减数分裂白发产生具有功能活性的配子 | 第55-56页 |
·D基因组的优先消除形成六倍体小黑麦 | 第56-57页 |
·人工合成小麦-黑麦杂种选育小黑麦的应用价值 | 第57-59页 |
第四章 Ph-KL基因诱导小麦-黑麦染色体配对能力分析 | 第59-67页 |
1. 实验材料和方法 | 第61-62页 |
·实验材料 | 第61页 |
·实验方法 | 第61-62页 |
·细胞学制片 | 第61页 |
·制备基因组原位杂交探针 | 第61-62页 |
·基因组原位杂交 | 第62页 |
2. 结果与分析 | 第62-65页 |
3.讨论 | 第65-67页 |
·ph-KL基因是与Ph1基因不同的大然隐性ph基因 | 第65页 |
·近缘关系更近的部分同源染色体之间更加容易参与配对 | 第65-67页 |
第五章 ph-KL基因诱导小麦-黑麦杂种染色体配对的类型分析 | 第67-74页 |
1. 材料和方法 | 第68-69页 |
·实验材料 | 第68页 |
·实验方法 | 第68-69页 |
·细胞学制片 | 第68页 |
·引物设计和PCR扩增 | 第68-69页 |
·探针标记 | 第69页 |
·原位杂交 | 第69页 |
2. 结果与分析 | 第69-72页 |
·ph-KL诱导的配对染色体的基因组组成 | 第69-70页 |
·ph-KL诱导配对染色体的部分同源群分布 | 第70-72页 |
3. 讨论 | 第72-74页 |
参考文献 | 第74-98页 |
致谢 | 第98-99页 |
在读期间论文发表情况 | 第99-100页 |