| 摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-15页 |
| 第一章 综述 | 第15-23页 |
| ·鱼类抗寒的研究 | 第15-19页 |
| ·营养对于鱼类抗寒能力的研究 | 第15-17页 |
| ·鱼类抗寒的分子生物学研究 | 第17-19页 |
| ·SCD基因家族的研究进展 | 第19-21页 |
| ·SCD基因的发现与表达分布 | 第19页 |
| ·SCD基因的功能 | 第19-20页 |
| ·SCD基因的调节 | 第20-21页 |
| ·细胞膜流动性的研究 | 第21-23页 |
| ·细胞膜流动性的研究手段 | 第21页 |
| ·细胞膜流动性的影响因素 | 第21-22页 |
| ·本研究的内容、目的及意义 | 第22-23页 |
| 第二章 大黄鱼（Pseudosciaena crocea）硬脂酰-辅酶A脱氢酶 Ⅰ（SCD1）基因的克隆与序列分析 | 第23-29页 |
| ·实验材料 | 第23-25页 |
| ·实验材料 | 第23页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第23-25页 |
| ·实验方法 | 第25-27页 |
| ·SCD1基因的本地blast与序列预测 | 第25页 |
| ·大黄鱼各组织总RNA的提取与逆转录总RNA | 第25-26页 |
| ·大黄鱼SCD1基因的克隆与鉴定 | 第26页 |
| ·大黄鱼SCD1基因序列分析 | 第26-27页 |
| ·实验结果 | 第27-29页 |
| ·大黄鱼SCD1基因的克隆与鉴定 | 第27-28页 |
| ·大黄鱼SCD1基因序列分析 | 第28-29页 |
| 第三章 大黄鱼（Pseudosciaena crocea）SCD1基因表达模式的研究 | 第29-37页 |
| ·实验材料 | 第29页 |
| ·实验材料 | 第29页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第29页 |
| ·实验试剂 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-32页 |
| ·大黄鱼SCD1基因组织特异性检测 | 第29页 |
| ·原核表达质粒的构建 | 第29页 |
| ·原核表达小规模诱导 | 第29-30页 |
| ·原核表达大规模诱导 | 第30页 |
| ·聚丙烯胶凝胶电泳检测原核表达产物 | 第30页 |
| ·蛋白纯化 | 第30-31页 |
| ·多克隆抗体制备 | 第31页 |
| ·免疫组织化学 | 第31页 |
| ·真核表达质粒构建 | 第31页 |
| ·Western blot分析 | 第31-32页 |
| ·冻存细胞的复苏、培养与传代 | 第32页 |
| ·冻存细胞的培养与传代 | 第32页 |
| ·实验结果与分析 | 第32-35页 |
| ·大黄鱼SCD1基因组织特异性检测 | 第32-33页 |
| ·大黄鱼SCD1原核蛋白表达 | 第33-34页 |
| ·大黄鱼SCD1抗体的Western blot分析 | 第34页 |
| ·大黄鱼SCD1基因真核表达 | 第34-35页 |
| ·讨论 | 第35-37页 |
| 第四章 大黄鱼（Pseudosciaena crocea）SCD1基因对于膜流动性的影响 | 第37-43页 |
| ·实验材料 | 第37-38页 |
| ·实验材料 | 第37页 |
| ·实验仪器与试剂 | 第37-38页 |
| ·实验方法 | 第38-39页 |
| ·光漂白荧光恢复实验(FRAP) | 第38页 |
| ·实验数据处理 | 第38-39页 |
| ·实验结果 | 第39-41页 |
| ·光漂白荧光恢复实验结果 | 第39页 |
| ·最佳温度下细胞膜流动性情况 | 第39-40页 |
| ·温度梯度下细胞膜流动性变化情况 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第50页 |
