摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
缩略词中英文对照 | 第7-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-29页 |
·植物盐害机理及耐盐性机制 | 第12-19页 |
·盐害对植物的影响 | 第12-15页 |
·植物耐盐性机制 | 第15-17页 |
·植物盐胁迫应答的分子机制及其在培育耐盐作物中的应用 | 第17-19页 |
·SOS途径基因研究进展 | 第19-22页 |
·S0S1 基因 | 第19-20页 |
·SOS2 基因 | 第20页 |
·S0S3 基因 | 第20-21页 |
·SCaBP8 基因 | 第21页 |
·SOS 途径相关基因之间的协作及耐盐性 | 第21-22页 |
·草评草的遗传转化研究进展 | 第22-26页 |
·草坪草植株的组织培养 | 第22-25页 |
·草坪草的遗传转化方法 | 第25-26页 |
·国内外利用基因工程改良草坪草耐盐性的研究 | 第26-27页 |
·本研究的目的和意义及创新点 | 第27-29页 |
·本研究的目的和意义 | 第27-28页 |
·创新点 | 第28-29页 |
第二章 高羊茅高频再生体系的建立 | 第29-56页 |
·材料 | 第29页 |
·植物材料 | 第29页 |
·方法 | 第29-33页 |
·种子预处理 | 第29-30页 |
·种子的灭菌 | 第30页 |
·培养基及培养条件 | 第30页 |
·种子发芽试验 | 第30页 |
·外植体的选择与准备 | 第30-31页 |
·愈伤组织诱导与继代培养 | 第31-32页 |
·愈伤组织分化 | 第32-33页 |
·再生植株的生根 | 第33页 |
·驯化移栽 | 第33页 |
·数据统计及分析方法 | 第33页 |
·结果与分析 | 第33-53页 |
·不同草坪草品种的种子发芽率 | 第33-34页 |
·不同种子萌发培养基及培养条件对出芽率的影响 | 第34-36页 |
·不同梯度2,4-D对草坪草种子发芽率的影响 | 第36-38页 |
·不同外植体对愈伤组织诱导率的影响 | 第38-39页 |
·预处理对愈伤组织诱导的影响 | 第39-40页 |
·不同培养条件对愈伤组织诱导的影响 | 第40页 |
·不同基因型对愈伤组织诱导的影响 | 第40-41页 |
·掐芽次数对愈伤组织诱导产生的影响 | 第41-42页 |
·不同梯度2,4-D对愈伤组织诱导的影响 | 第42-44页 |
·细胞分裂素6-BA对愈伤组织的影响 | 第44-46页 |
·不同激素浓度处理对愈伤组织分化的影响 | 第46-49页 |
·不同激素及鹿糖浓度处理对再生植株生根率的影响 | 第49-53页 |
·再生植株的移栽 | 第53页 |
·讨论 | 第53-56页 |
·不同外植体及基因型对高羊茅愈伤组织诱导率的影响 | 第53-54页 |
·不同浓度生长激素2,4-D及细胞分裂素6-BA对愈伤组织诱导的影响 | 第54页 |
·不同激素浓度处理对高羊茅愈伤组织分化的影响 | 第54-55页 |
·不同激素及簾糖浓度处理对高羊茅再生植株生根率的影响 | 第55-56页 |
第三章 高羊茅多基因遗传转化体系的建立 | 第56-68页 |
·材料 | 第56-58页 |
·植物材料 | 第56页 |
·质粒载体及菌株 | 第56页 |
·试剂 | 第56-57页 |
·培养基及培养条件 | 第57页 |
·主要仪器 | 第57-58页 |
·方法 | 第58-61页 |
·种子预处理 | 第58页 |
·种子的灭菌 | 第58页 |
·外植体与受体材料的准备 | 第58页 |
·农杆菌菌液的制备 | 第58-59页 |
·侵染浓度的测定 | 第59页 |
·农杆菌最佳侵染浓度的确定 | 第59页 |
·农杆菌最佳侵染时间旳确定 | 第59页 |
·共培养 | 第59页 |
·恢复除囷 | 第59页 |
·除菌剂的选择 | 第59-60页 |
·除菌剂头抱霉素选择压旳确定 | 第60页 |
·愈伤组织分化 | 第60页 |
·除草剂选择压的确定 | 第60页 |
·再生植株的生根 | 第60页 |
·驯化移栽 | 第60-61页 |
·结果与分析 | 第61-65页 |
·农杆菌最佳侵染浓度的确定 | 第61页 |
·农杆菌最佳侵染时间的确定 | 第61-62页 |
·共培养最佳时间的确定 | 第62页 |
·共培养方式的确定 | 第62-63页 |
·除菌剂种类的确定 | 第63页 |
·除菌剂头孢霉素(Cefotazime,Cef)选择压的确定 | 第63-64页 |
·除草剂 Glufosinate 筛选浓度的确定 | 第64-65页 |
·乙酰丁香酮对转化效率的影响 | 第65页 |
·讨论 | 第65-68页 |
·适用于农杆菌介导高羊茅遗传转化的抑菌抗生素 | 第65-66页 |
·最适农杆菌浸染浓度 | 第66页 |
·农杆菌最佳侵染时间的确定 | 第66页 |
·最适共培养时间和方式 | 第66-67页 |
·农杆菌介导高羊茅遗传转化中合适的PPT(Glufosinate)蹄选方式 | 第67页 |
·乙酰丁香醒I的使用 | 第67-68页 |
第四章 高羊茅转基因植株的获得与分子鉴定 | 第68-80页 |
·材料 | 第68-69页 |
·植物材料 | 第68页 |
·菌株与质粒 | 第68页 |
·培养基 | 第68-69页 |
·方法 | 第69-74页 |
·胚型愈伤组织的获得 | 第69页 |
·农杆菌介导的转化和转基因植物的再生 | 第69页 |
·转基因植株的PCR鉴定 | 第69-71页 |
·Southenr杂交分析 | 第71-73页 |
·RT-PCR 分析 | 第73页 |
·抗除草剂鉴定 | 第73-74页 |
·结果与分析 | 第74-77页 |
·高羊茅的遗传转化 | 第74-75页 |
·转基因植株的分子鉴定 | 第75-76页 |
·抗除草剂的鉴定 | 第76-77页 |
·讨论 | 第77-80页 |
第五章 转基因高羊茅的耐盐性鉴定 | 第80-89页 |
·材料和仪器 | 第80-81页 |
·材料 | 第80页 |
·仪器 | 第80-81页 |
·方法 | 第81页 |
·盐胁迫处理 | 第81页 |
·Na+和K+含量的测定 | 第81页 |
·离子流速的测定 | 第81页 |
·SOD、POD和CAT酶活性的测定,以及MDA和Pro含量的测定 | 第81页 |
·结果与分析 | 第81-86页 |
·盐胁迫下转基因高羊茅的表型变化 | 第81-82页 |
·盐胁迫下转基因植物Na~+和K~+在转基因植物中的积累 | 第82-83页 |
·盐胁迫下离子流速的变化 | 第83-85页 |
·盐胁迫下转基因植物生理生化指标的变化 | 第85-86页 |
·讨论 | 第86-89页 |
第六章 转基因高羊茅的生物学整合效应分析 | 第89-113页 |
·材料 | 第89页 |
·方法 | 第89-90页 |
·植株生理指标及养分的测定 | 第89-90页 |
·土壤理化及生物学性状的测定 | 第90页 |
·结果与分析 | 第90-110页 |
·碱土盐碱地种植转基因高羊茅生物学整合效应分析 | 第90-100页 |
·盐土盐碱地种植转基因高羊茅生物学整合效应分析 | 第100-110页 |
·讨论 | 第110-113页 |
·转基因高羊茅对土壤理化性质的影响 | 第110页 |
·不同类型盐碱地对转基因高羊茅生长的影响 | 第110页 |
·不同类型盐碱地对转基因高羊茅光合作用的影响 | 第110-111页 |
·不同类型盐碱地转基因高羊茅抗氧化酶活性、脯氨酸和两二醛含量的变化 | 第111-112页 |
·不同类型盐碱地对转基因高羊茅|直株离子含量的影响 | 第112-113页 |
第七章 结论与展望 | 第113-115页 |
·结论 | 第113-114页 |
·展望 | 第114-115页 |
参考文献 | 第115-133页 |
致谢 | 第133-134页 |
作者简介 | 第134页 |