| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-22页 |
| 1 研究背景 | 第10页 |
| 2 胞外聚合物的研究进展 | 第10-14页 |
| ·胞外聚合物(EPS)的定义和作用 | 第10-11页 |
| ·EPS的组成结构 | 第11-12页 |
| ·EPS的化学组成 | 第12页 |
| ·EPS的提取 | 第12-14页 |
| 3 重金属废水污染及其处理技术概述 | 第14-21页 |
| ·重金属废水污染种类及其来源 | 第14-15页 |
| ·重金属废水污染的毒性和危害 | 第15-16页 |
| ·重金属废水的处理方法 | 第16-19页 |
| ·重金属废水的传统处理方法 | 第16-18页 |
| ·重金属废水的生物吸附技术 | 第18-19页 |
| ·微生物胞外聚合物对重金属的吸附 | 第19-21页 |
| 4 本研究的的内容和意义 | 第21-22页 |
| 第二章 自然水体生物膜胞外聚合物的提取、组分分析及其对铅离子的吸附 | 第22-38页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第22-23页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·主要实验仪器 | 第22-23页 |
| 2 实验方法 | 第23-26页 |
| ·生物膜的培养 | 第23页 |
| ·生物膜EPS的提取 | 第23-24页 |
| ·生物膜EPS成分的初步分析 | 第24页 |
| ·生物膜EPS的制备 | 第24页 |
| ·生物膜EPS对重金属的吸附实验 | 第24-25页 |
| ·不同pH条件下Pb~(2+)的吸附 | 第24-25页 |
| ·不同Pb~(2+)初始浓度下的吸附 | 第25页 |
| ·不同EPS浓度下Pb~(2+)的吸附 | 第25页 |
| ·生物膜EPS的红外光谱分析 | 第25-26页 |
| 3 结果与讨论 | 第26-37页 |
| ·多糖、蛋白质、DNA、Pb~(2+)的标准曲线绘制 | 第26-28页 |
| ·5种EPS提取方法的结果比较和分析 | 第28-29页 |
| ·影响NaOH法提取生物膜胞外聚合物的因素 | 第29-31页 |
| ·NaOH溶液浓度对生物膜EPS提取效果的影响 | 第29-30页 |
| ·萃取时间对生物膜EPS提取效果的影响 | 第30-31页 |
| ·转速对生物膜EPS提取效果的影响 | 第31页 |
| ·生物膜胞外聚合物对Pb~(2+)的吸附 | 第31-34页 |
| ·pH值对EPS吸附Pb~(2+)的影响 | 第32-33页 |
| ·不同初始Pb~(2+)浓度对EPS吸附Pb~(2+)的影响 | 第33页 |
| ·不同EPS浓度对吸附Pb~(2+)的影响 | 第33-34页 |
| ·生物膜胞外聚合物吸附金属离子的红外光谱分析 | 第34-37页 |
| 4 本章小结 | 第37-38页 |
| 第三章 活性污泥胞外聚合物的合成、提取及其对铅离子的吸附 | 第38-59页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第38-39页 |
| ·实验材料 | 第38页 |
| ·主要实验仪器 | 第38-39页 |
| 2 实验方法 | 第39-44页 |
| ·活性污泥中产胞外聚合物菌株的筛选 | 第39页 |
| ·产胞外聚合物菌株的EPS的提取方法 | 第39-40页 |
| ·纯菌株的EPS对铅离子的吸附实验 | 第40-41页 |
| ·5株菌EPS对Pb~(2+)的吸附实验 | 第40页 |
| ·不同初始pH值下C2菌株EPS对Pb~(2+)的吸附实验 | 第40页 |
| ·不同初始Pb~(2+)浓度下C2菌株EPS对Pb~(2+)的吸附实验 | 第40-41页 |
| ·不同EPS浓度下C2菌株EPS对Pb~(2+)的吸附 | 第41页 |
| ·C2菌株EPS的红外光谱分析 | 第41页 |
| ·C2菌株EPS的产量 | 第41-42页 |
| ·pH值对C2菌株EPS产量的影响 | 第41页 |
| ·温度对C2菌株EPS产量的影响 | 第41页 |
| ·不同碳源对C2菌株EPS产量的影响 | 第41-42页 |
| ·不同氮源对C2株EPS产量的影响 | 第42页 |
| ·活性污泥产胞外聚合物菌株电镜扫描前处理 | 第42页 |
| ·C2菌株的分子生物学鉴定 | 第42-44页 |
| ·DNA的提取 | 第42-43页 |
| ·DNA检测 | 第43页 |
| ·PCR扩增 | 第43-44页 |
| ·序列分析及建立系统发育树 | 第44页 |
| 3 结果与讨论 | 第44-58页 |
| ·活性污泥产胞外聚合物菌株的筛选 | 第44-45页 |
| ·C2菌株EPS对铅离子的吸附 | 第45-51页 |
| ·原子吸收法测定Pb~(2+)的标准曲线 | 第45-46页 |
| ·5株菌的EPS对Pb~(2+)吸附的对比 | 第46-47页 |
| ·pH值对EPS吸附Pb~(2+)的影响 | 第47-48页 |
| ·不同初始Pb~(2+)浓度对EPS吸附Pb~(2+)的影响 | 第48-49页 |
| ·不同EPS浓度对吸附Pb~(2+)的影响 | 第49-50页 |
| ·C2菌株EPS吸附Pb~(2+)前后的红外光谱分析 | 第50-51页 |
| ·影响C2菌株EPS产量的因素 | 第51-55页 |
| ·pH值对C2菌株EPS产量的影响 | 第51-52页 |
| ·温度对C2菌株EPS产量的影响 | 第52-53页 |
| ·不同碳源对C2菌株EPS产量的影响 | 第53-54页 |
| ·不同氮源对C2菌株EPS产量的影响 | 第54-55页 |
| ·C2菌株产EPS前后的扫描电镜观察 | 第55-56页 |
| ·C2菌株的分子鉴定结果 | 第56-58页 |
| ·C2菌株的PCR结果 | 第56页 |
| ·序列分析及建立系统发育树 | 第56-58页 |
| 4 本章小结 | 第58-59页 |
| 第四章 胞外聚合物组分分析 | 第59-67页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第59-60页 |
| ·实验材料 | 第59页 |
| ·主要实验仪器 | 第59-60页 |
| 2 实验方法 | 第60-61页 |
| ·EPS的制备 | 第60页 |
| ·EPS的主要成分分析实验 | 第60页 |
| ·EPS胞外多糖分析实验 | 第60-61页 |
| ·胞外多糖的制备 | 第60-61页 |
| ·胞外多糖的水解 | 第61页 |
| ·胞外多糖的组分测定 | 第61页 |
| 3 结果与讨论 | 第61-65页 |
| ·EPS主要成分比较 | 第61-62页 |
| ·胞外多糖组分分析 | 第62-65页 |
| ·单糖在离子色谱中的出峰时间 | 第62-63页 |
| ·标准糖的标准曲线绘制 | 第63页 |
| ·胞外多糖成分分析 | 第63-65页 |
| 4 本章小结 | 第65-67页 |
| 第五章 结论与展望 | 第67-69页 |
| 1 主要结论 | 第67-68页 |
| 2 展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学位论文 | 第76页 |
