| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 缩略词 | 第11-12页 |
| 第1章 前言 | 第12-25页 |
| ·背景知识 | 第12-22页 |
| ·细胞凋亡 | 第12-13页 |
| ·细胞凋亡的途径 | 第13-15页 |
| ·细胞凋亡中的重要蛋白质 | 第15-18页 |
| ·恶性肿瘤与细胞凋亡 | 第18-20页 |
| ·抗肿瘤药物协同 | 第20页 |
| ·Sun Ginseng 研究进展 | 第20-21页 |
| ·表阿霉素研究进展 | 第21-22页 |
| ·紫杉醇研究进展 | 第22页 |
| ·论文的研究目的和设计思路 | 第22-25页 |
| ·论文的研究目的 | 第22-23页 |
| ·设计思路 | 第23-25页 |
| 第2章 材料与方法 | 第25-32页 |
| ·实验试剂与主要溶液配制 | 第25-26页 |
| ·实验用细胞株 | 第25页 |
| ·实验用试剂 | 第25页 |
| ·实验用抗体 | 第25页 |
| ·主要仪器 | 第25页 |
| ·主要溶液 | 第25-26页 |
| ·实验方法 | 第26-32页 |
| ·细胞培养 | 第26-27页 |
| ·MTT 比色法 | 第27页 |
| ·DAPI 染色 | 第27页 |
| ·流式双染 | 第27-28页 |
| ·全细胞裂解液制备方法 | 第28页 |
| ·线粒体及胞浆蛋白质的分离和制备 | 第28-29页 |
| ·BCA 法 | 第29页 |
| ·体外 Caspases 活力测定 | 第29-30页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第30页 |
| ·免疫印迹分析 | 第30-31页 |
| ·线粒体膜电位分析 | 第31-32页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第32-48页 |
| ·SG 能够提高肿瘤细胞对表阿霉素和紫杉醇的敏感性 | 第32-33页 |
| ·SG 提高肿瘤细胞对表阿霉素和紫杉醇的敏感性是药物协同的结果 | 第33-35页 |
| ·SG 分别与表阿霉素和紫杉醇联合对 HeLa 细胞杀伤效果是通过触发细胞凋亡实现的 | 第35-40页 |
| ·凋亡细胞形态学观察 | 第35-36页 |
| ·流式双染检测细胞凋亡 | 第36-38页 |
| ·体外 Caspase-3/7 活力检测 | 第38-39页 |
| ·PARP 断裂情况检测 | 第39-40页 |
| ·SG 分别与表阿霉素和紫杉醇协同诱导 HeLa 细胞凋亡过程中Caspase-8，-9 激活情况 | 第40-43页 |
| ·Caspase-8，-9 活力检测 | 第41页 |
| ·免疫印迹法检测 Caspase-8，-9 酶原及活性片段情况 | 第41-43页 |
| ·SG 分别与表阿霉素和紫杉醇协同诱导 HeLa 细胞凋亡过程中线粒体水平的变化 | 第43-45页 |
| ·细胞色素 c 的释放 | 第43-44页 |
| ·线粒体膜电位变化 | 第44-45页 |
| ·SG 分别与表阿霉素和紫杉醇协同诱导 HeLa 细胞凋亡过程中 Bak、Bax 的变化 | 第45-48页 |
| 第4章 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
