| 英文缩略词表 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 1 前言 | 第11-12页 |
| 2 材料和仪器 | 第12-16页 |
| ·研究对象 | 第12-13页 |
| ·细胞株来源 | 第13页 |
| ·实验动物 | 第13页 |
| ·试剂和仪器 | 第13-15页 |
| ·实验器材 | 第15页 |
| ·溶液的配制 | 第15-16页 |
| 3 实验方法 | 第16-29页 |
| ·A549 细胞培养 | 第16-17页 |
| ·A549 细胞总 RNA 提取 | 第17-20页 |
| ·外周血干细胞采集物单个核细胞的制备 | 第20页 |
| ·DCs 的培养 | 第20-21页 |
| ·DCs 的转染 | 第21页 |
| ·流式细胞仪检测 DCs 表面标志 | 第21-22页 |
| ·RT-PCR 法检测 DC 的转染效率 | 第22-24页 |
| ·自体 T 淋巴细胞的培养 | 第24-25页 |
| ·混合淋巴细胞反应（MLR） | 第25-26页 |
| ·肿瘤抗原特异性 CTL 的诱导 | 第26页 |
| ·DC 致敏淋巴细胞后淋巴细胞表型变化的鉴定 | 第26-27页 |
| ·细胞毒性试验 | 第27页 |
| ·T 细胞的冻存和复苏 | 第27页 |
| ·荷瘤裸鼠模型的建立 | 第27-28页 |
| ·DC 活化的淋巴细胞对荷瘤裸鼠的治疗作用 | 第28页 |
| ·组织病理学观察 | 第28页 |
| ·裸鼠皮下移植瘤细胞的免疫组织化学鉴定 | 第28-29页 |
| ·统计分析 | 第29页 |
| 4 结果 | 第29-39页 |
| ·DCs 的形态学观察 | 第29-30页 |
| ·A549 总 RNA 的电泳图 | 第30页 |
| ·流式细胞仪术检测 3 组 DCs 表面标志的表达情况 | 第30-32页 |
| ·RT-PCR 检测肿瘤 RNA 转染后 DCs 的肿瘤抗原的表达 | 第32页 |
| ·MLR 观察 T 细胞增殖 | 第32-33页 |
| ·T 细胞表面分子的表达 | 第33-34页 |
| ·细胞毒性试验 | 第34-35页 |
| ·移植瘤裸鼠模型的建立 | 第35页 |
| ·肿瘤抗原特异性CTL对荷瘤裸鼠模型的治疗作用 | 第35-37页 |
| ·肿瘤组织病理改变 | 第37-38页 |
| ·Bax、Bcl-2、COX-2、VEGF的免疫组化结果 | 第38-39页 |
| 5 讨论 | 第39-42页 |
| 6 结论 | 第42页 |
| 7 参考文献 | 第42-45页 |
| 附录 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 综述 | 第47-52页 |
| 参考文献 | 第50-52页 |
