胚胎发生晚期丰富蛋白基因对水稻细胞的转化及再生植株的分析
1 文献综述 | 第1-26页 |
·目的基因 | 第8-19页 |
·植物抗病虫害基因 | 第8-12页 |
·植物抗逆境基因 | 第12-19页 |
·转基因的方法 | 第19-22页 |
·DNA的直接导入 | 第19-21页 |
·种质系统介导基因转化 | 第21-22页 |
·生物介导法 | 第22页 |
·转基因作物研究动态 | 第22-24页 |
·转基因植物的安全性 | 第24-26页 |
2 引言 | 第26-27页 |
3 材料与方法 | 第27-35页 |
·试材 | 第27页 |
·主要实验仪器 | 第27-28页 |
·主要溶液及培养基配方 | 第28-30页 |
·方法 | 第30-35页 |
·质粒提取 | 第30页 |
·愈伤组织诱导 | 第30页 |
·愈伤组织的悬浮培养 | 第30-31页 |
·LEA3蛋白基因的转化 | 第31-32页 |
·转化愈伤组织的筛选及植株再生 | 第32页 |
·总DNA的提取(SDS法) | 第32页 |
·水稻总DNA的PCR | 第32-33页 |
·苗期胁迫处理 | 第33-35页 |
4 结果与分析 | 第35-56页 |
·愈伤组织的诱导 | 第35-39页 |
·基本培养基的影响 | 第35-36页 |
·糖原种类和浓度的影响 | 第36-37页 |
·2,4-D浓度对诱导愈伤组织的影响 | 第37-38页 |
·转化受体的影响 | 第38-39页 |
·LEA3基因的导入 | 第39-44页 |
·基因导入及抗性愈伤组织的筛选 | 第39-40页 |
·转化植株再生培养 | 第40-42页 |
·转化植株的再选择 | 第42-44页 |
·水稻总DNA的提取 | 第44页 |
·水稻总DNA的PCR检测 | 第44-45页 |
·转基因植株抗性分析 | 第45-55页 |
·盐胁迫实验 | 第45-48页 |
·水杨酸诱导胁迫实验 | 第48-55页 |
·结论 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-62页 |
致谢 | 第62页 |