| 中文摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-14页 |
| 缩略语表 | 第14-16页 |
| 引言 | 第16-21页 |
| 第一部分 大鼠骨髓间充质干细胞凋亡相关microRNA的鉴定和功能分析 | 第21-62页 |
| 1 前言 | 第21-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-37页 |
| ·实验动物 | 第22页 |
| ·主要实验试剂 | 第22-23页 |
| ·主要试剂配制方法 | 第23-24页 |
| ·主要实验设备 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25-37页 |
| 3 结果 | 第37-51页 |
| ·大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养及缺氧无血清凋亡模型的构建 | 第37-38页 |
| ·TaqMan低密度芯片分析大鼠骨髓间充质干细胞凋亡过程中的miRNA表达变化 | 第38-41页 |
| ·MicroRNA TaqMan qRT-PCR验证TLDA芯片结果 | 第41-44页 |
| ·miRNA在MSCs缺氧无血清处理下的动态变化 | 第44-45页 |
| ·miRNA mimics/inhibitor过表达/抑制相应的miRNA | 第45-46页 |
| ·过表达/抑制miRNA调控间充质干细胞的凋亡 | 第46-49页 |
| ·miRNA对间充质干细胞凋亡过程中Caspase-3/7活性的影响 | 第49-50页 |
| ·大鼠间充质干细胞凋亡过程中miRNA对线粒体功能的影响 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-55页 |
| 5 结论 | 第55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 第二部分 microRNA-21抑制过氧化氢诱导的骨髓间充质干细胞凋亡 | 第62-83页 |
| 1 前言 | 第62-63页 |
| 2 材料与方法 | 第63-72页 |
| ·实验动物 | 第63页 |
| ·主要实验试剂 | 第63-65页 |
| ·主要试剂配制方法 | 第65页 |
| ·主要实验设备 | 第65页 |
| ·实验方法 | 第65-72页 |
| 3 结果 | 第72-76页 |
| ·H_2O_2诱导大鼠骨髓间充质干细胞发生凋亡 | 第72-73页 |
| ·H_2O_2处理对骨髓间充质干细胞miRNA表达水平的影响 | 第73页 |
| ·miR-21抑制H_2O_2诱导的骨髓间充质干细胞凋亡 | 第73-74页 |
| ·miR-21对H_2O_2诱导的MSC凋亡过程中Caspase-3/7活性的影响 | 第74-75页 |
| ·miR-21下调大鼠骨髓间充质干细胞中PDCD4的表达水平 | 第75-76页 |
| 4 讨论 | 第76-78页 |
| 5 结论 | 第78页 |
| 参考文献 | 第78-83页 |
| 第三部分 microRNA-21表观遗传修饰改善大鼠骨髓间充质干细胞移植缺血心肌后的存活能力和心功能 | 第83-110页 |
| 1 前言 | 第83-84页 |
| 2 材料与方法 | 第84-94页 |
| ·实验动物 | 第84页 |
| ·主要实验试剂 | 第84-85页 |
| ·主要试剂配制方法 | 第85-86页 |
| ·主要实验设备 | 第86-87页 |
| ·实验方法 | 第87-94页 |
| 3 结果 | 第94-100页 |
| ·miR-21表观遗传修饰的MSCs移植大鼠心肌梗死模型 | 第94页 |
| ·miR-21表观遗传修饰提高移植后MSCs的存活率 | 第94-96页 |
| ·miR-21表观遗传修饰对移植后MSCs凋亡水平的影响 | 第96-98页 |
| ·移植miR-21表观遗传修饰的MSCs对心功能的影响 | 第98-100页 |
| 4 讨论 | 第100-103页 |
| 5 结论 | 第103页 |
| 参考文献 | 第103-110页 |
| 文献综述 | 第110-125页 |
| 参考文献 | 第120-125页 |
| 附录:个人简介及博士研究生期间相关学术成果 | 第125-128页 |
| 致谢 | 第128-130页 |
