| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-11页 |
| 缩写词简表 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 技术路线 | 第16-17页 |
| 材料和方法 | 第17-27页 |
| 1 材料 | 第17-19页 |
| ·细胞系 | 第17页 |
| ·试剂 | 第17-18页 |
| ·引物 | 第18页 |
| ·主要仪器 | 第18-19页 |
| ·生物信息学软件 | 第19页 |
| 2 方法 | 第19-27页 |
| ·细胞培养和去甲基化药物处理细胞 | 第19页 |
| ·MTT比色法检测去甲基化药物(5-aza-2-dC)对鼻咽癌细胞生长的影响 | 第19页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第19-20页 |
| ·蛋白质组学方法 | 第20-23页 |
| ·RT-PCR | 第23-24页 |
| ·甲基化特异性PCR(MSP) | 第24-26页 |
| ·Western blot分析 | 第26-27页 |
| 结果 | 第27-38页 |
| 1 去甲基化药物5-aza-2-dC最佳浓度的确定 | 第27-28页 |
| ·MTT比色法检测细胞的增殖 | 第27页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第27-28页 |
| 2 蛋白质组学方法筛选5-aza-2-dC实验组与对照组细胞的差异蛋白质 | 第28-34页 |
| ·蛋白质浓度测定 | 第28-29页 |
| ·实验组和对照组5-8F细胞总蛋白的双向凝胶电泳图谱及图像差异分析 | 第29-31页 |
| ·差异蛋白质点的质谱鉴定 | 第31-34页 |
| 3 差异蛋白质nm23-H1的表达验证 | 第34-35页 |
| 4 nm23-H1的甲基化分析 | 第35-38页 |
| ·RT-PCR检测5-aza-2-dC处理5-8F细胞后nm23-H1基因mRNA的表达变化 | 第35-36页 |
| ·5-8F细胞中nm23-H1基因的甲基化分析 | 第36-38页 |
| 讨论 | 第38-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-45页 |
| 综述 | 第45-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第55页 |
