| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-29页 |
| 1 课题研究目的 | 第11页 |
| 2 课题研究内容 | 第11-13页 |
| 3 课题研究意义 | 第13-15页 |
| 4 糖芯片研究进展 | 第15-25页 |
| ·构建糖芯片库 | 第16-17页 |
| ·构建糖芯片微阵列 | 第17-21页 |
| ·糖芯片检测方法 | 第21-23页 |
| ·糖芯片应用 | 第23-24页 |
| ·小结 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-29页 |
| 第二章 EDC/NHS介导的糖醛酸多糖的荧光标记和分离纯化 | 第29-56页 |
| 1 材料与仪器 | 第29-30页 |
| ·实验材料 | 第29页 |
| ·实验试剂 | 第29-30页 |
| ·实验仪器 | 第30页 |
| 2 实验方法 | 第30-34页 |
| ·一步法制备糖胺聚糖AF标记物 | 第31页 |
| ·两步法制备糖胺聚糖AF标记物 | 第31-32页 |
| ·多糖NHS酯纯化方法摸索 | 第31-32页 |
| ·EDC/NHS比例的摸索 | 第32页 |
| ·多糖伯羟基氧化及其荧光标记 | 第32-33页 |
| ·TEMPO氧化 | 第32-33页 |
| ·氧化多糖分子量变化 | 第33页 |
| ·氧化多糖单糖组成的测定 | 第33页 |
| ·氧化多糖标记 | 第33页 |
| ·荧光标记多糖的纯化、纯度和含量分析 | 第33-34页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第34-54页 |
| ·一步法制备糖胺聚糖AF标记物 | 第34-37页 |
| ·两步法制备糖胺聚糖AF标记物 | 第37-42页 |
| ·多糖NHS酯纯化方法摸索 | 第37-39页 |
| ·EDC/NHS比例的摸索 | 第39-42页 |
| ·多糖氧化及其荧光标记 | 第42-49页 |
| ·TEMPO氧化 | 第42-43页 |
| ·氧化多糖分子量变化 | 第43-45页 |
| ·氧化多糖单糖组成的测定 | 第45-48页 |
| ·氧化多糖荧光标记 | 第48-49页 |
| ·荧光标记多糖的纯化,纯度和含量分析 | 第49-54页 |
| 参考文献 | 第54-56页 |
| 第三章 多糖的羟基和还原端荧光标记及其分离纯化 | 第56-71页 |
| 1 材料与仪器 | 第56-57页 |
| ·实验材料 | 第56页 |
| ·实验试剂 | 第56页 |
| ·实验仪器 | 第56-57页 |
| 2 实验方法 | 第57-59页 |
| ·FITC还原胺化法标记 | 第57页 |
| ·FITC羟基标记 | 第57-58页 |
| ·DTAF羟基标记 | 第58页 |
| ·荧光标记多糖纯度和含量分析 | 第58-59页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第59-69页 |
| ·FITC醛基还原胺化标记 | 第59-62页 |
| ·FITC羟基标记 | 第62-64页 |
| ·DTAF羟基标记 | 第64-65页 |
| ·荧光标记多糖纯度和含量分析 | 第65-69页 |
| 4 结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-71页 |
| 第四章 荧光标记多糖在糖芯片上的应用研究 | 第71-94页 |
| 1 材料与仪器 | 第71-72页 |
| ·实验材料 | 第71页 |
| ·实验试剂 | 第71-72页 |
| ·实验仪器 | 第72页 |
| 2 实验方法 | 第72-74页 |
| ·手动点样仪制备芯片及其结合实验 | 第72-73页 |
| ·高密度糖芯片的制备及其与蛋白结合实验 | 第73-74页 |
| ·不同点样方式和不同点样基质选择 | 第73页 |
| ·糖胺聚糖结合实验 | 第73页 |
| ·28种荧光标记多糖芯片制备 | 第73-74页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第74-91页 |
| ·手动点样仪制备芯片及其结合实验 | 第74-79页 |
| ·高密度多糖芯片的制备及其在膜中保留率研究 | 第79-91页 |
| ·点样参数 | 第81-84页 |
| ·自动点样仪制备芯片和CS-56结合实验 | 第84-85页 |
| ·28种多糖芯片制备 | 第85-87页 |
| ·结缔组织生长因子结合实验 | 第87-91页 |
| 4 结论 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-94页 |
| 结论 | 第94-96页 |
| 创新点 | 第96-97页 |
| 发表及其参与发表的学术论文 | 第97-98页 |
| 硕士期间参与的课题 | 第98-99页 |
| 致谢 | 第99页 |